МИЕЛОИДНЫЕ ОПУХОЛИ

Генетические маркеры наследственной тромбофилии и риск тромботических осложнений у больных с истинной полицитемией

МИЕЛОИДНЫЕ ОПУХОЛИ , ,

Д.И. Шихбабаева, Л.Б. Полушкина, В.А. Шуваев, И.С. Мартынкевич, С.И. Капустин, Т.Б. Замотина, М.С. Фоминых, В.Ю. Удальева, И.И. Зотова, В.М. Шмелева, О.А. Смирнова, С.В. Волошин, С.С. Бессмельцев, А.В. Чечеткин, К.М. Абдулкадыров

ФГБУ «Российский научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии ФМБА», 2-я Советская ул., д. 16, Санкт-Петербург, Российская Федерация, 191024

Для переписки: Джарият Исмаиловна Шихбабаева, 2-я Советская ул., д. 16, Санкт-Петербург, Российская Федерация, 191024; тел.: +7(931)201-71-28; e-mail: djeri.shih@mail.ru

Для цитирования: Шихбабаева Д.И., Полушкина Л.Б., Шуваев В.А. и др. Генетические маркеры наследственной тромбофилии и риск тромботических осложнений у больных с истинной полицитемией. Клиническая онкогематология. 2017;10(1):85–92.

DOI: 10.21320/2500-2139-2017-10-1-85-92

РЕФЕРАТ

Обоснование. Тромботические осложнения — одна из основных проблем в лечении истинной полицитемии (ИП). Они ухудшают качество жизни больных и могут стать причиной летального исхода. Тромботический эпизод часто служит первым событием, ведущим к постановке диагноза данного гематологического заболевания. Патогенез тромбозов при миелопролиферативных новообразованиях, в частности ИП, сложный. Назначение антиагрегантов в отсутствие тромбозов, а также антикоагулянтов после тромботических событий требует особого внимания и разработки соответствующих рекомендаций. Назначение антикоагулянтов невозможно без учета риска геморрагических осложнений, также характерных для миелопролиферативных новообразований.

Цель. Оценка влияния генетических маркеров наследственной тромбофилии на риск развития тромботических осложнений у больных ИП.

Методы. В настоящей работе анализу подвергнуты данные 116 больных ИП, обследованных на наличие ряда маркеров наследственной тромбофилии. Это варианты генов фактора V (G1691A, лейденская мутация), протромбина, метилентетрагидрофолатредуктазы (MTHFR), фибриногена (FI), ингибитора активатора плазминогена (PAI-1), тромбоцитарного рецептора фибриногена (GPIIIA). Изучена частота указанных маркеров, а также их роль в развитии тромбозов у данной категории больных.

Результаты. В работе определена частота различных маркеров наследственной тромбофилии у больных ИП. В группах больных с тромбозами и без таковых выявлены статистически значимые различия частоты обнаружения различных генетических маркеров наследственной тромбофилии и уровня гомоцистеина.

Заключение. Наличие маркеров наследственной тромбофилии у больных ИП в дебюте заболевания может служить убедительным аргументом в пользу назначения адекватной антиагрегантной и антикоагулянтной терапии. Обоснована необходимость проведения дальнейших исследований по изучению роли маркеров наследственной тромбофилии в определении прогностических особенностей течения заболевания и в оценке риска тромботических осложнений при ИП.

Ключевые слова: истинная полицитемия, наследственная тромбофилия, тромбозы.

Получено: 11 декабря 2016 г.

Принято в печать: 21 декабря 2016 г.

Читать статью в PDFpdficon

ЛИТЕРАТУРА

  1. Wolanskyj AP, Schwager SM, McClure RF, et al. Essential thrombocythemia beyond the first decade: life expectancy, long-term complication rates, and prognostic factors. Mayo Clin Proc. 2006;81(2):159–66. doi: 10.4065/81.2.159.
  2. Carobbio A, Finazzi G, Guerini V, et al. Leukocytosis is a risk factor for thrombosis in essential thrombocythemia: interaction with treatment, standard risk factors and Jak2 mutation status. Blood. 2007;109(6):2310–3. doi: 10.1182/blood-2006-09-046342.
  3. Гусева С.А., Бессмельцев С.С., Абдулкадыров К.М., Гончаров Я.П. Истинная полицитемия. Киев, СПб.: Логос, 2009. 405 с.
    [Guseva SA, Bessmel’tsev SS, Abdulkadyrov KM, Goncharov YaP. Istinnaya politsitemiya. (Polycythemia vera.) Kiev, Saint Petersburg: Logos Publ.; 2009. 405 p. (In Russ)]
  4. Finazzi G, Rambaldi A, Guerini V, et al. Risk of thrombosis in patients with essential thrombocythemia and polycythemia vera according to JAK2 V617F mutation status. Haematologica. 2007;92(1):135–6. doi: 10.3324/haematol.10634.
  5. Vannucchi AM, Antonioli E, Guglielmelli P, et al. Prospective identification of high-risk polycythemia vera patients based on JAK2 V617F allele burden. Leukemia. 2007;21(9):1952–9. doi: 10.1038/sj.leu.2404854.
  6. Besses C, Cervantes F, Pereira A, et al. Major vascular complications in essential thrombocythemia: a study of the predictive factors in a series of 148 patients. Leukemia. 1999;13(2):150–4. doi: 10.1038/sj.leu.2401270.
  7. Passamonti F, Rumi E, Pungolino E, et al. Life expectancy and prognostic factors for survival in patients with polycythemia vera and essential thrombocythemia. Am J Med. 2004;117(10):755–61. doi: 10.1016/j.amjmed.2004.06.032.
  8. Marchioli R, Finazzi G, Specchia G, et al. Cardiovascular events and intensity of treatment in polycythemia vera. N Engl J Med. 2013;368(1):22–33. doi: 10.1155/2011/794240.
  9. Hebbel RP, Boogaerts MA, Eaton JW, et al. Erythrocyte adherence to endothelium in sickle-cell anemia. A possible determinant of disease severity. N Engl J Med. 1980;302(18):992–5. doi: 10.1056/nejm198005013021803.
  10. Wautier JL, Paton RC, Wautier MP, et al. Increased adhesion of erythrocytes to endothelial cells in diabetes mellitus and its relation to vascular complications. N Engl J Med. 1981;305(5):237–42. doi: 10.1056/nejm198107303050501.
  11. Wautier MP, El Nemer W, Gane P, et al. Increased adhesion to endothelial cells of erythrocytes from patients with polycythemia vera is mediated by laminin alpha5 chain and Lu/BCAM. Blood. 2007;110(3):894–901. doi: 10.1182/blood-2006-10-048298.
  12. Falanga A, Marchetti M. Thrombotic disease in the myeloproliferative neoplasms. Hematology Am Soc Hematol Educ Program. 2012;2012(1):571–81.
  13. Goette NP, Lev PR, Heller PG, et al. Monocyte IL-2Ralpha expression is associated with thrombosis and the JAK2V617F mutation in myeloproliferative neoplasms. Cytokine. 2010;51(1):67–72. doi: 10.1016/j.cyto.2010.04.011.
  14. Jensen MK, De NullyBrown P, Lund BV, et al. Increased platelet activation and abnormal membrane glycoprotein content and redistribution in myeloproliferative disorders. Br J Haematol. 2000;110(1):116–24. doi: 10.1046/j.1365-2141.2000.02030.x.
  15. Arellano-Rodrigo E, Alvarez-Larran A, Reverter JC, et al. Increased platelet and leukocyte activation as contributing mechanisms for thrombosis in essential thrombocythemia and correlation with the JAK2 mutational status. Haematologica. 2006;91(2):169–75.
  16. Landolfi R, Marchioli R, Kutti J, et al. Efficacy and safety of low-dose aspirin in polycythemia vera. ACC Curr J Rev. 2004;13(4):4–10. doi: 10.1016/j.accreview.2004.03.074.
  17. Abdulkarim K, Ridell B, Johansson P, et al. The impact of peripheral blood values and bone marrow findings on prognosis for patients with essential thrombocythemia and polycythemia vera. Eur J Haematol. 2011;86(2):148–55. doi: 10.1111/j.1600-0609.2010.01548.x.
  18. Barbui T, Thiele J, Passamonti F, et al. Initial bone marrow reticulin fibrosis in polycythemia vera exerts an impact on clinical outcome. Blood. 2012;119(10):2239–41. doi: 10.1182/blood-2011-11-393819.
  19. Barbui T, Thiele J, Passamonti F, et al. Survival and disease progression in essential thrombocythemia are significantly influenced by accurate morphologic diagnosis: an international study. J Clin Oncol. 2011;29(23):3179–84. doi: 10.1200/jco.2010.34.5298.
  20. Vaidya R, Gangat N, Jimma T, et al. Plasma cytokines in polycythemia vera: phenotypic correlates, prognostic relevance, and comparison with myelofibrosis. Am J Hematol. 2012;87(11):1003–5. doi: 10.1002/ajh.23295.
  21. Marchioli R., Finazzi G., Landolfi R, et al. Vascular and Neoplastic Risk in a Large Cohort of Patients With Polycythemia Vera. J Clin Oncol. 2005;23(10):2224–32. doi: 10.1200/jco.2005.07.062.
  22. Gruppo Italiano Studio Policitemia. Polycythemia vera: the natural history of 1213 patients followed for 20 years. Ann Intern Med. 1995;123(9):656–64. doi: 10.7326/0003-4819-123-9-199511010-00003.
  23. Carobbio A, Thiele J, Passamonti F, et al. Risk factors for arterial and venous thrombosis in WHO-defined essential thrombocythemia: an international study of 891 patients. Blood. 2011;117(22):5857–9. doi: 10.1182/blood-2011-02-339002.
  24. Stein BL, Saraf S, Sobol U, et al. Age-related differences in disease characteristics and clinical outcomes in polycythemia vera. Leuk Lymphoma. 2013;54(9):1989–95. doi: 10.3109/10428194.2012.759656.
  25. Giona F, Teofili L, Moleti ML, et al. Thrombocythemia and polycythemia in patients younger than 20 years at diagnosis: clinical and biologic features, treatment, and long-term outcome. Blood. 2012;119(10):2219–27. doi: 10.1182/blood-2011-08-371328.
  26. Vannucchi AM, Antonioli E, Guglielmelli P, et al. Clinical profile of homozygous JAK2 617V>F mutation in patients with polycythemia vera or essential thrombocythemia. Blood. 2007;110(3):840–6. doi: 10.1182/blood-2006-12-064287.
  27. Alvarez-Larran A, Cervantes F, Bellosillo B, et al. Essential thrombocythemia in young individuals: frequency and risk factors for vascular events and evolution to myelofibrosis in 126 patients. Leukemia. 2007;21(6):1218–23. doi: 10.1038/sj.leu.2404693.
  28. Wolansky AP, Schwager SM, McClure RF, et al. Essential thrombocythemia beyond the first decade: life expectancy, long-term complication rates, and prognostic factors. Mayo Clin Proc. 2006;81(2):159–66. doi: 10.4065/81.2.159.
  29. Сervantes F, Alvarez-Larran A, Arellano-Rodrigo E, et al. Frequency and risk factors for thrombosis in idiopathic myelofibrosis: analysis in a series of 155 patients from a single institution. Leukemia. 2006;20(1):55–60. doi: 10.1038/sj.leu.2404048.
  30. Barbui T, Carobbio A, Cervantes F, et al. Thrombosis in primary myelofibrosis: incidence and risk factors. Blood. 2010;115(4):778–82. doi: 10.1182/blood-2009-08-238956.
  31. Gangat N, Wolanskyj AP, Tefferi A. Abdominal vein thrombosis in essential thrombocythemia: prevalence, clinical correlates, and prognostic implications. Eur J Haematol. 2006;77(4):327–33. doi: 10.1111/j.1600-0609.2006.00715.x.
  32. De Stefano V, Fiorini A, Rossi E, et al. Incidence of the JAK2 V617F mutation among patients with splanchnic or cerebral venous thrombosis and without overt chronic myeloproliferative disorders. J Thromb Haemost. 2007;5(4):708–14. doi: 10.1111/j.1538-7836.2007.02424.x.
  33. Landolfi R, Di Gennaro L, Nicolazzi MA, et al. Polycythemia vera: gender-related phenotypic differences. Int Emerg Med. 2011;7(6):509–15. doi: 10.1007/s11739-011-0634-3.
  34. Grandone E, Colaizzo D, Tiscia GL, et al. Venous thrombosis in oral contraceptive users and the presence of the JAK2 V617F mutation. Thromb Haemost. 2008;99(3):640–2. doi: 10.1160/th07-09-0570.
  35. Капустин С.И., Кармацкая И.И., Дрижун Ю.С. и др. Опыт диагностики наследственных факторов риска тромбоза у больных истинной полицитемией. Вестник гематологии. 2011;4:25–6.
    [Kapustin SI, Karmatskaya II, Drizhun YuS, et al. Experience in diagnosing of hereditary thrombosis risk factors in patients with polycythemia vera. Vestnik gematologii. 2011;4:25–6. (In Russ)]
  36. Капустин С.И., Шмелева В.М., Сидорова Ж.Ю. и др. Молекулярные детерминанты наследственной тромбофилии: современное состояние и перспективы генодиагностики (обзор литературы). Вестник гематологии. 2011;VII(4):84–90.
    [Kapustin SI, Shmeleva VM, Sidorova ZhYu, et al. Molecular determinants of hereditary thrombophilia: present state and perspectives of genetic diagnostics (literature review). Vestnik gematologii. 2011;VII(4):84–90. (In Russ)]
  37. Bick R., Kaplan H. Syndromes of thrombosis and hypercoagulability: congenital and acquired thrombophilias. Clin Appl Thromb Hemost. 1998;4(1):25–50. doi: 10.1177/107602969800400106.
  38. O’Shaughnessy D, Markis M, Lillicap D, eds. Practical hemostasis and thrombosis. Oxford: Blackwell Publishing; 2005. рр. 224. doi: 10.1002/9780470988633.
  39. Khan S, Dickerman JD. Hereditary thrombophilia. Thromb J. 2006;4(1):15. doi: 10.1186/1477-9560-4-15.
  40. Lane DA, Grant PJ. Role of hemostatic gene polymorphisms in venous and arterial thrombotic disease. Blood. 2000;95(5):1517–32.
  41. Honda S, Honda Y, Baer B, et al. The impact of three-dimensional structure on the expression of P1A alloantigens on human integrin beta 3. Blood. 1995;86(1):234–42.
  42. Капустин С.И., Салтыкова Н.Б., Каргин В.Д. и др. Генетические факторы риска тромбоэмболии легочной артерии у больных с тромбозом глубоких вен. Клинико-лабораторный консилиум. 2007;16:56–60.
    [Kapustin SI, Saltykova NB, Kargin VD, et al. Genetic factors of risk of pulmonary embolism in patients with deep vein thrombosis. Kliniko-laboratornyi konsilium. 2007;16:56–60. (In Russ)]
  43. Undas A, Brozek J, Szczeklik A. Homocysteine and thrombosis: from basic science to clinical evidence. Thromb Haemost. 2005;94(5):907–15. doi: 10.1160/th05-05-0313.
  44. Tevet M, Ionescub R, Dragan C, et al. Influence of the JAK2 V617F Mutation and Inherited Thrombophilia on the Thrombotic Risk among Patients with Myeloproliferative Disorders. J Clin Med. 2015;10(1):27–32.
  45. Gisslinger H, Mullner M, Pabinger I, et al. Mutation of the prothrombin gene and thrombotic events in patients with polycythemia vera or essential thrombocythemia: a cohort study. Haematologica. 2005;90(3):408–10.
  46. De Stefano V, Za T, Rossi E, et al. Influence of the JAK2 V617F mutation and inherited thrombophilia on the thrombotic risk among patients with essential thrombocythemia. Haematologica. 2009;94(5):733–7. doi: 10.3324/haematol.13869.
  47. Kreher S, Ochsenreither S,Trappe RU, et al. Prophylaxis and management of venous thromboembolism in patients with myeloproliferative neoplasms: consensus statement of the Haemostasis Working Party of the German Society of Hematology and Oncology (DGHO), the Austrian Society of Hematology and Oncology (OGHO) and Society of Thrombosis and Haemostasis Research (GTH e.V.). Ann Hematol. 2014;93(12):1953–63. doi: 10.1007/s00277-014-2224-8.
  48. Casini A, Fontana P, Lecompte TP. Thrombotic complications of myeloproliferative neoplasms: risk assessment and risk-guided management. J Thromb Haemost. 2013;11(7):1215–27. doi: 10.1111/jth.12265.
  49. Stefano V, Za T, Rossi E, et al. Recurrent thrombosis in patients with polycythemia vera and essential thrombocythemia: incidence, risk factors, and effect of treatments. Haematologica. 2008;93(3):372–80. doi: 10.3324/haematol.12053.

 

 

Модели миелофиброза (обзор литературы и собственные данные)

МИЕЛОИДНЫЕ ОПУХОЛИ , ,

А.А. Силютина, И.И. Гин, Н.М. Матюхина, Е.Н. Балаян, П.А. Бутылин

ФГБУ «Северо-Западный федеральный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова» Минздрава России, ул. Аккуратова, д. 2, Санкт-Петербург, Российская Федерация, 197341

Для переписки: Павел Андреевич Бутылин, канд. биол. наук, ул. Аккуратова, д. 2, Санкт-Петербург, Российская Федерация, 197341; e-mail: butylinp@gmail.com

Для цитирования: Силютина А.А., Гин И.И., Матюхина Н.М. и др. Модели миелофиброза (обзор литературы и собственные данные). Клиническая онкогематология. 2017;10(1):75–84.

DOI: 10.21320/2500-2139-2017-10-1-75-84

РЕФЕРАТ

Актуальность и цели. Развитие хронических миелопролиферативных заболеваний проходит длительный латентный период, затрудняя исследования механизмов патогенеза. Наблюдения, отмеченные в клинической практике, зачастую требуют экспериментальной проверки. Механизмы онкологической трансформации, связанные с возникновением мутаций, встречающихся при хронических миелопролиферативных заболеваниях, были подтверждены на моделях трансгенных животных. Биологические модели позволили выявить комплексную природу развития миелофиброза. Однако изучение отдельных клеточных механизмов требует создания новых моделей. В работе представлен как обзор опубликованных моделей развития миелопролиферативных заболеваний, в основном первичного миелофиброза, так и результаты исследования разработанной клеточной линии с экспрессией JAK2 V617F. Цель настоящей работы — создание клеточной линии с экспрессией трансформирующей мутации JAK2 V617F в клетках острого моноцитарного лейкоза THP-1.

Методы. Основой для создания трансгенной клеточной линии послужила линия клеток моноцитарного лейкоза THP-1, способная дифференцироваться в макрофаги. Мутация V617F была получена методом направленного мутагенеза. Было создано две трансгенных линии: одна с экспрессией гена JAK2 с мутацией V617F, другая — JAK2 дикого типа.

Результаты. Обе трансгенные линии характеризовались повышенной экспрессией JAK2 по сравнению с немодифицированными клетками. При рутинном культивировании трансгенные THP-1 сохраняли морфологию моноцитов. После обработки форболовым эфиром THP-1 дифференцировались в макрофаги и прикреплялись к культуральному пластику. Адгезировавшие клетки принимали различную форму: часть отличалась сферической формой, у других отмечены псевдоподии. Значимых различий по доле жизнеспособных клеток не наблюдалось. Однако макрофаги с экспрессией мутантного гена JAK2 и JAK2 дикого типа имели тенденцию к уменьшению количества нежизнеспособных клеток при культивировании.

Заключение. Полученная клеточная модель может служить объектом для оценки влияния мутации JAK2 V617F на про- и антифибротический потенциал макрофагов, что может пролить свет на патогенетическую роль макрофагов в развитии миелофибороза. Кроме того, с помощью данной модели можно исследовать новые методы терапии и диагностики как первичного, так и вторичного миелофиброза.

Ключевые слова: Ph-негативные хронические миелопролиферативные заболевания, первичный миелофиброз, JAK2 V617F, трансгенные животные.

Получено: 15 сентября 2016 г.

Принято в печать: 13 декабря 2016 г.

Читать статью в PDFpdficon

ЛИТЕРАТУРА

  1. Vardiman JW, Harris NL, Brunning RD. The World Health Organization (WHO) classification of the myeloid neoplasms. Blood 2002;100(7):2292–302. doi: 10.1182/blood-2002-04-1199.
  2. Hoffman R, Rondelli D. Biology and treatment of primary myelofibrosis. Hematol Am Soc Hematol Educ Program. 2007;1:346–54. doi: 10.1182/asheducation-2007.1.346.
  3. Mesa RA, Niblack J, Wadleigh M, et al. The burden of fatigue and quality of life in myeloproliferative disorders (MPDs): an international internet-based survey of 1179 MPD patients. Cancer. 2007;109(1):68–76. doi: 10.1002/cncr.22365.
  4. Cervantes F, Dupriez B, Pereira A, et al. New prognostic scoring system for primary myelofibrosis based on a study of the International Working Group for Myelofibrosis Research and Treatment. Blood. 2009;113(13):2895–901. doi: 10.1182/blood-2008-07-170449.
  5. Scherber R, Dueck AC, Johansson P, et al. The Myeloproliferative Neoplasm Symptom Assessment Form (MPN-SAF): international prospective validation and reliability trial in 402 patients. Blood. 2011;118(2):401–8. doi: 10.1182/blood-2011-01-328955.
  6. Barosi G, Mesa RA, Thiele J, et al. Proposed criteria for the diagnosis of post-polycythemia vera and post-essential thrombocythemia myelofibrosis: a consensus statement from the International Working Group for Myelofibrosis Research and Treatment. Leukemia. 2008;22(2):437–8. doi: 10.1038/sj.leu.2404914.
  7. Tefferi A. Myelofibrosis with myeloid metaplasia. N Engl J Med. 2000;342(17):1255–65. doi: 10.1056/nejm200004273421706.
  8. Jacobson RJ, Salo A, Fialkow PJ. Agnogenic myeloid metaplasia: a clonal proliferation of hematopoietic stem cells with secondary myelofibrosis. Blood. 1978;51:189–94.
  9. Reeder TL, Bailey RJ, Dewald GW, Tefferi A. Both B and T lymphocytes may be clonally involved in myelofibrosis with myeloid metaplasia. Blood. 2003;101(5):1981–3. doi: 10.1182/blood-2002-07-2341.
  10. Reilly JT. Idiopathic myelofibrosis: pathogenesis, natural history and management. Blood Rev. 1997;11(4):233–42. doi: 10.1016/s0268-960x(97)90022-9.
  11. Mehta J, Wang H, Iqbal SU, Mesa R. Epidemiology of myeloproliferative neoplasms (MPN) in the United States. Leuk Lymphoma. 2014;55(3):595–600. doi: 10.3109/10428194.2013.813500.
  12. Kaushansky K. Thrombopoietin: The primary regulator of platelet production. Blood. 1995;86(2):419–31.
  13. de Sauvage FJ, Carver-Moore K, Luoh SM, et al. Physiological regulation of early and late stages of megakaryocytopoiesis by thrombopoietin. J Exp Med. 1996;183(2):651–6.
  14. Vannucchi AM, Villeval J-L, Wagner-Ballon O, et al. Animal Models of Myelofibrosis. In: Conn PM, ed. Sourcebook of Models for Biomedical Research. Totowa: Humana Press Inc.; 2008. pр. 713–23. doi: 10.1007/s12223-008-0071-5.
  15. Ulich TR, del Castillo J, Senaldi G, et al. Systemic hematologic effects of PEG-rHuMGDF-induced megakaryocyte hyperplasia in mice. Blood. 1996;87(12):5006–15.
  16. Villeval JL, Cohen-Solal K, Tulliez M, et al. High thrombopoietin production by hematopoietic cells induces a fatal myeloproliferative syndrome in mice. Blood. 1997;90(11):4369–83.
  17. Yan XQ, Lacey D, Fletcher F, et al. Chronic exposure to retroviral vector encoded MGDF (MPL-ligand) induces lineage-specific growth and differentiation of megakaryocytes in mice. Blood. 1995;86(11):4025–33.
  18. Ohwada A, Rafii S, Moore MA, Crystal RG. In vivo adenovirus vector-mediated transfer of the human thrombopoietin cDNA maintains platelet levels during radiation-and chemotherapy-induced bone marrow suppression. Blood. 1996;88(3):778–84.
  19. Cannizzo SJ, Frey BM, Raffi S, et al. Augmentation of blood platelet levels by intratracheal administration of an adenovirus vector encoding human thrombopoietin cDNA. Nat Biotechnol. 1997;15(6):570–3. doi: 10.1038/nbt0697-570.
  20. Abina MA, Tulliez M, Duffour MT, et al. Thrombopoietin (TPO) knockout phenotype induced by cross-reactive antibodies against TPO following injection of mice with recombinant adenovirus encoding human TPO. J Immunol. 1998;160(9):4481–9.
  21. Frey BM, Rafii S, Teterson M, et al. Adenovector-mediated expression of human thrombopoietin cDNA in immune-compromised mice: Insights into the pathophysiology of osteomyelofibrosis. J Immunol. 1998;160(2):691–9.
  22. Zhou W, Toombs CF, Zou T, et al. Transgenic mice overexpressing human c-MPL ligand exhibit chronic thrombocytosis and display enhanced recovery from 5-fluorouracil or antiplatelet serum treatment. Blood. 1997;89(5):1551–9.
  23. Kakumitsu H, Kamezaki K, Shimoda K, et al. Transgenic mice overexpressing murine thrombopoietin develop myelofibrosis and osteosclerosis. Leuk Res. 2005;29(7):761–9. doi: 10.1016/j.leukres.2004.12.009.
  24. Yanagida M, Ide Y, Imai A, et al. The role of transforming growth factor-beta in PEG-rHuMGDF-induced reversible myelofibrosis in rats. Br J Haematol. 1997;99(4):739–45.
  25. Abina MA, Tulliez M, Lacout C, et al. Major effects of TPO delivered by a single injection of a recombinant adenovirus on prevention of septicemia and anemia associated with myelosuppression in mice: Risk of sustained expression inducing myelofibrosis due to immunosuppression. Gene Ther. 1998;5(4):497–506. doi: 10.1038/sj.gt.3300638.
  26. Shultz LD, SchweitzerPA, Christianson SW, et al. Multiple defects in innate and adaptive immunologic function in NOD/LtSz-SCID mice. J. Immunol. 1995;154:180–91.
  27. Serreze DV, Gaedeke JW, Leiter EH. Hematopoietic stem-cell defects underlying abnormal macrophage development and maturation in NOD/Lt mice: defective regulation of cytokine receptors and protein kinase C. Proc Natl Acad Sci USA. 1993;90(20):9625–9. doi: 10.1073/pnas.90.20.9625.
  28. Wagner-Ballon O, Hedia Chagraoui H, Eric Prina E, et al. Monocyte/Macrophage Dysfunctions Do Not Impair the Promotion of Myelofibrosis by High Levels of Thrombopoietin. J Immunol. 2006;176(11):6425–33. doi: 10.4049/jimmunol.176.11.6425.
  29. Tefferi A. Experimental myelofibrosis in mice and the implications to human disease. Leuk Res. 2005;29(7):723–6. doi: 10.1016/j.leukres.2004.12.006.
  30. Tsai SF, Martin DI, Zon LI, et al. Cloning of cDNA for the major DNA-binding protein of the erythroid lineage through expression in mammalian cells. Nature. 1989;339(6224):446–51. doi: 10.1038/339446a0.
  31. Romeo PH, Prandini MH, Joulin V, et al. Megakaryocytic and erythrocytic lineages share specific transcription factors. Nature. 1990;344(6265):447–9. doi: 10.1038/344447a0.
  32. Yu C, Cantor AB, Yang H, et al. Targeted deletion of a high-affinity GATA-binding site in the GATA-1 promoter leads to selective loss of the eosinophil lineage in vivo. J Exp Med. 2002;195(11):1387–95. doi: 10.1084/jem.20020656.
  33. Migliaccio AR, Rana RA, Sanchez M, et al. GATA-1 as a regulator of mast cell differentiation revealed by the phenotype of the GATA-1low mouse mutant. J Exp Med. 2003;197(3):281–96. doi: 10.1084/jem.20021149.
  34. McDevitt MA, Shivdasani RA, Fujiwara Y, et al. A “knockdown” mutation created by cis-element gene targeting reveals the dependence of erythroid cell maturation on the level of transcription factor GATA-1. Proc Natl Acad Sci USA. 1997;94(13): 6781–5. doi: 10.1073/pnas.94.13.6781.
  35. Shivdasani RA, Fujiwara Y, McDevitt MA, et al. A line-age-selective knockout establishes the critical role of transcription factor GATA-1 in megakaryocyte growth and platelet development. EMBO J. 1997;16(13):3965–73. doi: 10.1093/emboj/16.13.3965.
  36. Vyas P, Ault K, Jackson CW, et al. Consequences of GATA-1 deficiency in megakaryocytes and platelets. Blood. 1999;93(9):2867–75.
  37. Centurione L, Di Baldassarre A, Zingariello M, et al. Increased and pathologic emperipolesis of neutrophils within megakaryocytes associated with marrow fibrosis in GATA-1(low) mice. Blood. 2004;104(12):3573–80. doi: 10.1182/blood-2004-01-0193.
  38. Vannucchi AM, Bianchi L, Cellai C, et al. Development of myelofibrosis in mice genetically impaired for GATA-1 expression (GATA-1(low) mice). Blood. 2002;100(4):1123–32. doi: 10.1182/blood-2002-06-1913.
  39. Vannucchi AM, Migliaccio AR, Paoletti F, et al. Pathogenesis of myelofibrosis with myeloid metaplasia: Lessons from mouse models of the disease. Semin Oncol. 2005;32(4):365–72. doi: 10.1053/j.seminoncol.2005.04.008.
  40. Radich J. The Molecular Biology of Myeloproliferative Disorders. Cancer Cell. 2010;18(1):7–8. doi: 10.1016/j.ccr.2010.06.006.
  41. Baxter EJ, Scott LM, Campbell PJ, et al. Acquired mutation of the tyrosine kinase JAK2 in human myeloproliferative disorders. Lancet. 2005;365(9464):1054–61. doi: 10.1016/s0140-6736(05)74230-6.
  42. Kralovics R, Passamonti F, Buser AS, et al. A gain-of-function mutation of JAK2 in myeloproliferative disorders. N Engl J Med. 2005;352(17):1779–90. doi: 10.1056/nejmoa051113.
  43. Levine RL, Wadleigh M, Cools J, et al. Activating mutation in the tyrosine kinase JAK2 in polycythemia vera, essential thrombocythemia, and myeloid metaplasia with myelofibrosis. Cancer Cell. 2005;7(4):387–97. doi: 10.1016/j.ccr.2005.03.023.
  44. Kiladjian JJ. The spectrum of JAK2-positive myeloproliferative neoplasms. Hematol Am Soc Hematol Educ Program. 2012;2012:561–6. doi: 10.1182/asheducation-2012.1.561.
  45. Levine RL, Gilliland DG. Myeloproliferative disorders. Blood. 2008;112(6):2190–8. doi: 10.1182/blood-2008-03-077966.
  46. Chen M, Cheng A, Chen YQ, et al. The amino terminus of JAK3 is necessary and sufficient for binding to the common gamma chain and confers the ability to transmit interleukin 2-mediated signals. Proc Natl Acad Sci USA. 1997;94(13):6910–5. doi: 10.1073/pnas.94.13.6910.
  47. Saharinen P, Silvennoinen O. The pseudokinase domain is required for suppression of basal activity of Jak2 and Jak3 tyrosine kinases and for cytokine-inducible activation of signal transduction. J Biol Chem. 2002;277(49):47954–63. doi: 10.1074/jbc.m205156200.
  48. Griffith J, Black J, Faerman C, et al. The structural basis for autoinhibition of FLT3 by the juxtamembrane domain. Mol Cell. 2004;13(2):169–78. doi: 10.1016/s1097-2765(03)00505-7.
  49. Lindauer K, Loerting T, Liedl KR, et al. Prediction of the structure of human Janus kinase 2 (JAK2) comprising the two carboxy-terminal domains reveals a mechanism for autoregulation. Protein Engin. Design Select. 2001;14(1):27–37. doi: 10.1093/protein/14.1.27.
  50. Parganas E, Wang D, Stravopodis D, et al. Jak2 is essential for signaling through a variety of cytokine receptors. Cell. 1998;93(3):385–95. doi: 10.1016/s0092-8674(00)81167-8.
  51. Levine RL, Loriaux M, Huntly BJ, et al. The JAK2V617F activating mutation occurs in chronic myelomonocytic leukemia and acute myeloid leukemia, but not in acute lymphoblastic leukemia or chronic lymphocytic leukemia. Blood. 2005;106(10):3377–9. doi: 10.1182/blood-2005-05-1898.
  52. Jelinek J, Oki Y, Gharibyan V, et al. JAK2 mutation 1849G>T is rare in acute leukemias but can be found in CMML, Philadelphia-chromosome negative CML and megakaryocytic leukemia. Blood. 2005;106(10):3370–3. doi: 10.1182/blood-2005-05-1800.
  53. Steensma DP, Dewald GW, Lasho TL, et al. The JAK2 V617F activating tyrosine kinase mutation is an infrequent event in both “atypical” myeloproliferative disorders and the myelodysplastic syndrome. Blood. 2005;106(4):1207–9. doi: 10.1182/blood-2005-03-1183.
  54. James C, Ugo V, Le Couedic JP, et al. A unique clonal JAK2 mutation leading to constitutive signaling causes polycythaemia vera. Nature. 2005;434(7037):1144–8. doi: 10.1038/nature03546.
  55. Scott LM, Scott MA, Campbell PJ, Green AR. Progenitors homozygous for the V617F mutation occur in most patients with polycythemia vera, but not essential thrombocythemia. Blood. 2006;108(7):2435–7. doi: 10.1182/blood-2006-04-018259.
  56. Wernig G, Mercher T, Okabe R, et al. Expression of Jak2V617F causes a polycythemia vera-like disease with associated myelofibrosis in a murine bone marrow transplant model. Blood. 2006;107(11):4274–81. doi: 10.1182/blood-2005-12-4824.
  57. Lacout C, Pisani DF, Tulliez M, et al. JAK2V617F expression in murine hematopoietic cells leads to MPD mimicking human PV with secondary myelofibrosis. Blood. 2006;108(5):1652–60. doi: 10.1182/blood-2006-02-002030.
  58. Tiedt R, Hao-Shen H, Sobas MA, et al. Ratio of mutant JAK2-V617F to wild type JAK2 determines the MPD phenotypes in transgenic mice. Blood. 2007;111(8):3931–40. doi: 10.1182/blood-2007-08-107748.
  59. Xing S, Ho WT, Zhao W, et al. Transgenic expression of JAK2V617F causes myeloproliferative disorders in mice. Blood. 2008;111(10):5109–17. doi: 10.1182/blood-2007-05-091579.
  60. Marty C, Lacout C, Martin A, et al. Myeloproliferative neoplasm induced by constitutive expression of JAK2V617F in knock-in mice. Blood. 2010;116(5):783–7. doi: 10.1182/blood-2009-12-257063.
  61. Li J, Kent DG, Chen E, Green AR. Mouse models of myeloproliferative neoplasms: JAK of all grades. Dis Model Mech. 2011;4(3):311–7. doi: 10.1242/dmm.006817.
  62. Pikman Y, Lee BH, Mercher T, et al. MPLW515L is a novel somatic activating mutation in myelofibrosis with myeloid metaplasia. PLoS Med. 2006;3(7):e270. doi: 10.1371/journal.pmed.0030270.
  63. Pardanani AD, Levine RL, Lasho T, et al. MPL515 mutations in myeloproliferative and other myeloid disorders: A study of 1182 patients. Blood. 2006;108(10):3472–6. doi: 10.1182/blood-2006-04-018879.
  64. Nangalia J, Massie CE, Baxter EJ, et al. Somatic CALR mutations in myeloproliferative neoplasms with nonmutated JAK2. N Engl J Med. 2013;369(25):2391–405. doi: 10.1056/NEJMoa1312542.
  65. Klampfl T, Gisslinger H, Harutyunyan AS, et al. Somatic mutations of calreticulin in myeloproliferative neoplasms. N Engl J Med. 2013;369(25):2379–90. doi: 10.1056/NEJMoa1311347.
  66. Wang WA, Groenendyk J, Michalak M. Calreticulin signaling in health and disease. Int J Biochem Cell Biol. 2012;44(6):842–6. doi: 10.1016/j.biocel.2012.02.009.
  67. Michalak M, Groenendyk J, Szabo E, et al. Calreticulin, a multi-process calcium-buffering chaperone of the endoplasmic reticulum. Biochem J. 2009;417(3):651–66. doi: 10.1042/BJ20081847.
  68. Gold LI, Eggleton P, Sweetwyne MT, et al. Calreticulin: non-endoplasmic reticulum functions in physiology and disease. FASEB J. 2010;24(3):665–83. doi: 10.1096/fj.09-145482.
  69. Luo B, Lee AS. The critical roles of endoplasmic reticulum chaperones and unfolded protein response in tumorigenesis and anticancer therapies. Oncogene. 2012;32(7):805–18. doi: 10.1038/onc.2012.130.
  70. Rumi E, Pietra D, Ferretti V, et al. JAK2 or CALR mutation status defines subtypes of essential thrombocythemia with substantially different clinical course and outcomes. Blood. 2014;123(10):1544–51. doi: 10.1182/blood-2013-11-539098.
  71. Cabagnols X, Defour JP, Ugo V, et al. Differential association of calreticulin type 1 and type 2 mutations with myelofibrosis and essential thrombocytemia: relevance for disease evolution. Leukemia. 2014;29(1):249–52. doi: 10.1038/leu.2014.270.
  72. Marty C, Pecquet C, Nivarthi H, et al. Calreticulin mutants in mice induce an MPL-dependent thrombocytosis with frequent progression to myelofibrosis. Blood. 2016;127(10):1317–24. doi: 10.1182/blood-2015-11-679571.
  73. Chachoua I, Pecquet C, El-Khoury M, et al. Thrombopoietin receptor activation by myeloproliferative neoplasm associated calreticulin mutants. Blood. 2016;127(10):1325–35. doi: 10.1182/blood-2015-11-681932.
  74. Thiele J, Kvasnicka HM, Boeltken B. Resident bone marrow macrophages in idiopathic (primary) myelofibrosis (IMF): a histochemical and morphometric study on sequential trephine biopsies. Leuk Res. 1999;23(11):983–5. doi: 10.1016/s0145-2126(99)00120-4.
  75. Tsuchiya S, Kobayashi Y, Goto Y, et al. Induction of maturation in cultured human monocytic leukemia cells by a phorbol diester. Cancer Res. 1982;42(4):1530–6.

 

 

Клиническая и гематологическая характеристика больных хроническим миелолейкозом в современных условиях: результаты российской части международного многоцентрового проспективного популяционного исследования EUTOS Population-based CML Study

МИЕЛОИДНЫЕ ОПУХОЛИ , ,

О.В. Лазарева1, А.Г. Туркина1, Е.Ю. Челышева1, И.А. Тищенко1, М.А. Галайко2, О.М. Сендерова3, В.М. Пепеляева4, С.В. Мересий5, А.С. Лучинин6, Г.И. Милютина7, Л.В. Гаврилова8, Л.Б. Авдеева9, О.Ю. Виноградова10, С.М. Куликов1

1 ФГБУ «Гематологический научный центр» Минздрава России, Новый Зыковский пр-д, д. 4а, Москва, Российская Федерация, 125167

2 ЦКБ № 2 им. Н.А. Семашко ОАО РЖД, ул. Лосиноостровская, стр. 43, Москва, Российская Федерация, 107150

3 ГБУЗ «Иркутская ордена «Знак Почета» областная клиническая больница», микрорайон Юбилейный, д. 100, Иркутск, Российская Федерация, 664049

4 ГБУЗ «Ордена «Знак Почета» Пермская краевая клиническая больница», ул. Пушкина, д. 85, Пермь, Российская Федерация, 614990

5 ГБУЗ «Клиническая медико-санитарная часть № 1», б-р Гагарина, д. 68, Пермь, Российская Федерация, 614077

6 ГБУЗ «Кировская областная клиническая больница», ул. Воровского, д. 42, Киров, Российская Федерация, 610027

7 ГБУЗ «Областная клиническая больница № 1», пр-т Станке Димитрова, д. 86, Брянск, Российская Федерация, 241033

8 ФГБУ «Республиканская клиническая больница № 4» Минздрава России, ул. Ульянова, д. 32, Саранск, Российская Федерация, 430032

9 ГУЗ «Краевая клиническая больница», ул. Коханского, д. 7, Чита, Российская Федерация, 672038

10 ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева» Минздрава России, ул. Саморы Машелы, д. 1, Москва, Российская Федерация, 117997

Для переписки: Ольга Вениаминовна Лазарева, канд. мед. наук, Новый Зыковский пр-д, д. 4а, Москва, Российская Федерация, 125167; тел.: +7(495)612-48-60; e-mail: stakhino@gmail.com

Для цитирования: Лазарева О.В., Туркина А.Г., Челышева Е.Ю. и др. Клиническая и гематологическая характеристика больных хроническим миелолейкозом в современных условиях: результаты российской части международного многоцентрового проспективного популяционного исследования EUTOS Population-based CML Study. Клиническая онкогематология. 2017;10(1):65–74.

DOI: 10.21320/2500-2139-2017-10-1-65-74

РЕФЕРАТ

Актуальность. В последнее десятилетие основное внимание в вопросах изучения хронического миелолейкоза (ХМЛ) уделено молекулярно-генетической диагностике и новым высокоэффективным методам лечения. Информация об исходных характеристиках пациентов при первичной диагностике ХМЛ в литературе практически не обсуждается.

Цель. Представить клинико-гематологические, молекулярно-генетические и демографические данные пациентов, полученные при первичной диагностике ХМЛ.

Пациенты и методы. Характеристика пациентов с ХМЛ представлена на основании данных, собранных российской исследовательской научной группой по ХМЛ в рамках международного проекта European Treatment and Outcome Study of CML в Европе (EUTOS, изучение результатов лечения ХМЛ). В исследование включено 197 больных с впервые установленным диагнозом ХМЛ в период с 2009 по 2012 г. из 6 регионов РФ: Мордовия, Киров, Пермь (2 центра), Брянск, Иркутск и Чита.

Результаты. Установлено, что в 94 % случаев заболевание выявлено в хронической фазе (ХФ), в 6 % — в фазе акселерации (ФА) и бластного криза (БК). Доля пациентов без клинической симптоматики, у которых ХМЛ заподозрен только на основании изменений в общем анализе крови, составила 40 %. Из субъективной симптоматики наиболее частыми были жалобы на слабость: 77 % случаев при ХФ и 100 % — в ФА и БК. Для всех больных были характерны лейкоцитоз, сдвиг влево в лейкоцитарной формуле до промежуточных клеток миелоцитарного ряда, а также расширение гранулоцитарного ростка костного мозга. У всех больных диагноз ХМЛ был подтвержден цитогенетическими либо молекулярно-генетическими методами исследования. Анализу подвергнуты социально-демографические характеристики больных ХМЛ и сопутствующая патология на момент установления диагноза.

Заключение. В результате исследования составлен «портрет больного ХМЛ». Показано, что внедрение цитогенетических и молекулярно-генетических методов исследования позволяет диагностировать ХМЛ у значительной части больных на ранних этапах заболевания при отсутствии выраженных клинических признаков прогрессирования; данные о сопутствующей патологии требуют особого внимания при выборе терапии с учетом длительности ее проведения. На основании собранных демографических и социальных характеристик больных ХМЛ, отмечено, что эта группа пациентов является социально активной, для которой особенно актуальны вопросы сохранения работоспособности и качества жизни.

Ключевые слова: хронический миелолейкоз, клинико-гематологическая характеристика, популяционное исследование.

Получено: 2 августа 2016 г.

Принято в печать: 7 декабря 2016 г.

Читать статью в PDFpdficon

ЛИТЕРАТУРА

  1. Hehlmann R, Hochhaus A, Baccarani M, on behalf of the European Leukemia Net. Chronic myeloid leukemia. Lancet. 2007;370(9584):342–50. doi: 10.1016/s0140-6736(07)61165-9.
  2. Волкова М.А. Амбулаторное лечение и диспансеризация больных хроническими лейкозами. М.: Медицина, 1979. 216 с.
    [Volkova MA. Ambulatornoe lechenie i dispanserizatsiya bol’nykh khronicheskimi leikozami. (Outpatient treatment and mass health examination of patients with chronic leukemias.) Moscow: Meditsina Publ.; 1979. 216 p. (In Russ)]
  3. Туркина А.Г., Челышева Е.Ю. Стратегия терапии хронического миелолейкоза: возможности и перспективы. Терапевтический архив. 2013;7:4–9.
    [Turkina AG, Chelysheva EYu. Therapeutic strategies for chronic myeloid leukemia: possibilities and perspectives. Terapevticheskii arkhiv. 2013;7:4–9. (In Russ)]
  4. Bjorkholm M, Ohm L, Eloranta S, et al. Success story of targeted therapy in chronic myeloid leukemia: a population-based study of patients diagnosed in Sweden from 1973 to 2008. J Clin Oncol. 2011;29(18):2514–20. doi: 10.1200/jco.2011.34.7146.
  5. Kantarjian H, O’Brien S, Jabbour E, et al. Improved survival in chronic myeloid leukemia since the introduction of imatinib therapy: a single-institution historical experience. Blood. 2012;119(9):1981–7. doi: 10.1182/blood-2011-08-358135.
  6. Baccarani M, Deininger MW, Rosti G, et al. European LeukemiaNet recommendations for the management of chronic myeloid leukemia: 2013. Blood. 2013;122(6):872–84. doi: 10.1182/blood-2013-05-501569.
  7. Зарицкий А.Ю., Ломаиа Э.Г., Виноградова О.Ю. и др. Результаты многоцентрового исследования терапии гливеком больных хроническим миелолейкозом в хронической фазе. Гематология и трансфузиология. 2007;2:13–7.
    [Zaritskii AYu, Lomaia EG, Vinogradova OYu, et al. Results of a multi-center study of treatment of patients with chronic phase chronic myeloid leukemia with glivec. Gematologiya i transfuziologiya. 2007;2:13–7. (In Russ)]
  8. Лазарева О.В., Туркина А.Г., Гусарова Г.А. и др. Итоги 12-летней терапии ингибиторами тирозинкиназ больных в поздней хронической фазе хронического миелолейкоза после неудач лечения ИФН-a. Сибирский научный медицинский журнал. 2015;35(1):90–7.
    [Lazareva OV, Turkina AG, Gusarova GA, et al. The results of 12 years treatment of patients in late chronic phase of chronic myeloid leukemia by tyrosine kinase inhibitors after failure INF-a. Sibirskii nauchnyi meditsinskii zhurnal. 2015;35(1):90–7. (In Russ)]
  9. Шухов О.А. Молекулярная и цитогенетическая характеристика Ph-позитивного клона у больных хроническим миелолейкозом при длительном воздействии ингибиторов тирозинкиназ: Автореф. дис. ¼ канд. мед. наук. М., 2015. С. 10–11.
    [Shukhov OA. Molekulyarnaya i tsitogeneticheskaya kharakteristika Ph-pozitivnogo klona u bol’nykh khronicheskim mieloleikozom pri dlitel’nom vozdeistvii ingibitorov tirozinkinaz. (Molecular and cytogenetic characteristics of Ph-positive clone in patients with chronic myeloid leukemia after a long-term exposure to tyrokinase inhibitors.) [dissertation] Moscow; 2015. pр. 10–11. (In Russ)]
  10. O’Brien S, Abboud CN, Akhtari M, et al. Clinical Practice Guidelines in Oncology. Chronic Myelogenous Leukemia, Version 1.2014. J Natl Compr Canc Netw. 2013;11:1327–40.
  11. Воробьев А.И. (ред.). Руководство по гематологии. М.: Ньюдиамед, 2005. Т. 1. С. 251–3.
    [Vorob’ev AI, ed. Rukovodstvo po gematologii. (Guidelines on hematology.) Moscow: Newdiamed Publ.; 2005. Vol. 1. pp. 251–3. (In Russ)]
  12. Rowe JM. Clinical and laboratory features of the myeloid and lymphocytic leukemias. Am J Med Technol. 1983;49(2):103–9.
  13. Hughes TP, Goldman JM. Chronic myeloid leukemia. In: Hematology, Basic Principles and Practice, 2nd edition. Ed. by R Hoffman. New York: Churchill Livingstone; 1995. pp. 854–69.
  14. Lichtman MA. Chronic myelogenous leukemia and related disorders. In: Williams Hematology, 5th edition. Ed. by E Beutler, MA Lichtman, et al. New York: McGraw-Hill; 1995. pp. 298–324.
  15. Athens JW. Chronic Myeloid Leukemia. In: Wintrobe’s Clinical Hematology, 9th edition. Ed. by GR Lee, TC Bithell, et al. Philadelphia: Lea & Febiger; 1993. pp. 1969–98.
  16. Savage DG, Szydlo RM, Goldman JM. Clinical features at diagnosis in 430 patients with chronic myeloid leukaemia seen at a referral center over a 16-year period. Br J Haematol. 1997;96(1):111–6. doi: 10.1046/j.1365-2141.1997.d01-1982.x.
  17. O’Brien SG, Guilhot F, Larson R, et al. Imatinib compared with interferon and low-dose cytarabine for newly diagnosed chronic-phase chronic myeloid leukemia. N Engl J Med. 2003;348(11):994–1004. doi: 10.1056/nejmoa022457.
  18. Cortes JE, Baccarani M, Guilhot F, et al. Phase III, randomized, open-label study of daily imatinib mesylate 400 mg versus 800 mg in patients with newly diagnosed, previously untreated chronic myeloid leukemia in chronic phase using molecular endpoints: tyrosine kinase inhibitor optimization and selectivity study. J Clin Oncol. 2009;28(3):424–30. doi: 10.1200/jco.2009.25.3724.
  19. Saglio G, Kim DW, Issaragrisil S, et al. Nilotinib versus imatinib for newly diagnosed chronic myeloid leukemia. N Engl J Med. 2010;362(24):2251–9. doi: 10.1056/nejmoa0912614.
  20. Kantarjian H, Shah NP, Hochhaus A, et al. Dasatinib versus imatinib in newly diagnosed chronic-phase chronic myeloid leukemia. N Engl J Med. 2010;362(24):2260–70. doi: 10.1056/nejmoa1002315.
  21. Cortes JE, Kim DW, Kantarjian HM, et al. Bosutinib versus imatinib in newly diagnosed chronic-phase chronic myeloid leukemia: results from the BELA trial. J Clin Oncol. 2012;30(28):3486–92. doi: 10.1200/jco.2011.38.7522.
  22. Castagnetti F, Testoni N, Luatti S, et al. Deletions of the derivative chromosome 9 do not influence the response and the outcome of chronic myeloid leukemia in early chronic phase treated with imatinib mesylate. GIMEMA CML Working Party analysis. J Clin Oncol. 2010;28(16):2748–54. doi: 10.1200/jco.2009.26.7963.
  23. Gugliotta G, Castagnetti F, Palandri F, et al. Frontline imatinib treatment of chronic myeloid leukemia: no impact of age on outcome, a survey by the GIMEMA CML working party. Blood. 2011;117(21):5591–9. doi: 10.1182/blood-2010-12-324228.
  24. Preudhomme C, Guilhot J, Nicolini FE, et al. Imatinib plus Peginterferon alfa-2a in chronic myeloid leukemia. N Engl J Med. 2010;363(26):2511–21. doi: 10.1056/nejmoa1004095.
  25. Hehlmann R, Lauseker M, Jung-Munkwitz S, et al. Tolerability-adapted imatinib 800 mg/d versus 400 mg/d versus 400 mg/d plus interferon-ɑ in newly diagnosed chronic myeloid leukemia. J Clin Oncol. 2011;29(12):1634–42. doi: 10.1200/jco.2010.32.0598.
  26. De Lavallade H, Apperley JF, Khorashad J, et al. Imatinib for newly diagnosed patients with chronic myeloid leukemia: incidence of sustained responses in an intention-to-treat analysis. J Clin Oncol. 2008;26(20):3358–63. doi: 10.1200/jco.2007.15.8154.
  27. Jain P, Kantarjian H, Nazha A, et al. Early responses predict better outcomes in patients with newly diagnosed chronic myeloid leukemia: results with four tyrosine kinase inhibitor modalities. Blood. 2013;121(24):4867–74. doi: 10.1182/blood-2013-03-490128.
  28. Абдулкадыров, Туркина А.Г. и др. Рекомендации по диагностике и терапии хронического миелолейкоза. СПб., М., 2013. С. 67.
    [Abdulkadyrov KM, Turkina AG, et al. Rekomendatsii po diagnostike i terapii khronicheskogo mieloleikoza. (Guidelines for diagnosis and treatment of chronic myeloid leukemia.) Saint Petersburg, Moscow; 2013. pр. 67. (In Russ)]
  29. European Leukemia Net. [Internet] Available from: http://www.leukemia-net.org/content/international_trials/structure/index_eng.html. (accessed 05.01.2017).
  30. Hasford J, Baccarani M, Hoffmann V, et al. Predicting complete cytogenetic response and subsequent progression-free survival in 2060 patients with CML on imatinib treatment: the EUTOS score. Blood. 2011;118(3):686–92. doi: 10.1182/blood-2010-12-319038.
  31. Sokal JE, Cox EB, Baccarani M, et al. Prognostic discrimination in «good-risk» chronic granulocytic leukemia. Blood. 1984;63(4):789–99.
  32. Hasford J, Pfirmann M, Hehlmann R, et al. A new prognostic score for survival of patients with chronic myeloid leukemia treated with interferon alfa. J Natl Cancer Inst. 1998;90(11):850–8. doi: 10.1093/jnci/90.11.850.
  33. Куликов С.М., Виноградова О.Ю., Челышева Е.Ю. и др. Заболеваемость хроническим миелолейкозом в 6 регионах России по данным популяционного исследования 2009–2012 гг. Терапевтический архив. 2014;86(7):24–30.
    [Kulikov SM, Vinogradova OYu, Chelysheva EYu, et al. Incidence of chronic myeloid leukemia in 6 regions of Russia according to the data of the 2009–2012 population-based study. Terapevticheskii arkhiv. 2014;86(7):24–30. (In Russ)]
  34. Lazareva OV, Chelysheva EYu, Tischenko IA, et al. Incidence of second neoplasm in patients with chronic myeloid leukemia analyzed in the frame of international research project EUTOS population based study in Russian Federation. EHA-20. EHA Learning Center. 2015: Abstract 103689.
  35. Deininger MWN, Druker BJ. Specific Targeted Therapy of Chronic Myelogenous Leukemia with Imatinib. Pharmacol Rev. 2003;55(3):401–23. doi: 10.1124/pr.55.3.4.
  36. Talpaz M, Silver RT, Druke BJ, et al. Imatinib induces durable hematologic and cytogenetic responses in patients with accelerated phase chronic myeloid leukemia: results of a phase 2 study. Blood. 2002;99(6):1928–37. doi: 10.1182/blood.v99.6.1928.
  37. Lee SJ. Chronic myeloid leukemia. Br J Haematol. 2000;111(4):993–1009. doi: 10.1111/j.1365-2141.2000.02216.x.
  38. Туркина А.Г., Голенков А.К., Напсо Л.И. и др. Российский регистр по лечению хронического миелоидного лейкоза в рутинной клинической практике: итоги многолетней работы. Эффективная фармакотерапия. 2015;10:10–5.
    [Turkina AG, Golenkov AK, Napso LI, et al. Russian Registry for treatment of chronic myeloid leukemia in routine clinical practice: results of many years of work. Effektivnaya farmakoterapiya. 2015;10:10–5. (In Russ)]
  39. Hoffmann VS, Baccarani M, Hasford J, et al. The EUTOS population-based registry: incidence and clinical characteristics of 2904 CML patients in 20 European countries. Leukemia. 2015;29(6):1336–43. doi: 10.1038/leu.2015.73.
  40. Hehlman R. How I treat CML blast crisis. Blood. 2012;120(4):737–47. doi: 10.1182/blood-2012-03-380147.
  41. Body weight index. [Internet] Available from: http://www.calculator-imt.com. (accessed 05.01.2017).

 

Молекулярный мониторинг уровня транскрипта RUNX1-RUNX1T1 при острых миелобластных лейкозах на фоне терапии

МИЕЛОИДНЫЕ ОПУХОЛИ , , ,

Л.Л. Гиршова, Е.Г. Овсянникова, С.О. Кузин, Е.Н. Горюнова, Р.И. Вабищевич, А.В. Петров, Д.В. Моторин, Д.В. Бабенецкая, В.В. Иванов, К.В. Богданов, И.В. Холопова, Т.С. Никулина, Ю.В. Миролюбова, Ю.А. Алексеева, А.Ю. Зарицкий

ФГБУ «Северо-Западный федеральный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова» Минздрава России, ул. Аккуратова, д. 2, Санкт-Петербург, Российская Федерация, 197341

Для переписки: Екатерина Геннадьевна Овсянникова, ул. Аккуратова, д. 2, Санкт-Петербург, Российская Федерация, 197341; тел.: +7(921)313-68-35; e-mail: katrin51297@mail.ru

Для цитирования: Гиршова Л.Л., Овсянникова Е.Г., Кузин С.О. и др. Молекулярный мониторинг уровня транскрипта RUNX1-RUNX1T1 при острых миелобластных лейкозов на фоне терапии. Клиническая онкогематология. 2016;9(4):456–64.

DOI: 10.21320/2500-2139-2016-9-4-456-464

РЕФЕРАТ

Актуальность. Современные подходы к терапии острых миелобластных лейкозов (ОМЛ) заключаются в достижении максимальной редукции опухоли и, соответственно, эрадикации лейкозного клона. За исключением случаев изолированной молекулярной перестройки RUNX1-RUNX1T1, целью терапии является достижение неопределяемого уровня таргетного (исследуемого) гена.

Цель. Оценить динамику уровня RUNX1-RUNX1T1 и соответствующих клинических проявлений в ходе мониторинга на различных этапах программной терапии и после ее завершения.

Методы. В работе представлено описание 10 наблюдений ОМЛ с изолированной экспрессией RUNX1-RUNX1T1 (n = 4) и в сочетании с различными молекулярными и цитогенетическими аномалиями (n = 6). Кроме того, представлено наблюдение длительного мониторинга экспрессии гена методом количественного определения RUNX1-RUNX1T1 с помощью ПЦР в реальном времени.

Результаты. Частота рецидивов в группе со снижением уровня экспрессии RUNX1-RUNX1T1 ³ 2 log составила 75 % в сравнении с пациентами, у которых был меньше уровень снижения транскрипта с частотой рецидивов 0 % (p = 0,05). Нарастание уровня RUNX1-RUNX1T1 на фоне сохранения костномозговой ремиссии более чем на 1 log совпадало с развитием костномозгового рецидива в течение 5–18 нед. Кроме того, возможно длительное сохранение определенного уровня транскрипта после завершения программной терапии без развития рецидивов.

Заключение. В работе подвергнуты анализу возможные молекулярные предпосылки различных клинических исходов ОМЛ у больных с длительной персистенцией транскрипта RUNX1-RUNX1T1. Это, возможно, позволит сформировать индивидуализированный подход к пациентам с ОМЛ.

Ключевые слова: острый миелобластный лейкоз, ОМЛ, RUNX1-RUNX1T1, молекулярный мониторинг.

Получено: 5 апреля 2016 г.

Принято в печать: 18 апреля 2016 г.

Читать статью в PDFpdficon

ЛИТЕРАТУРА

  1. Bitter MA, Le Beau MM, Rowley JD, et al. Association between morphology, karyotype, and clinical features in myeloid leukemias. Hum Pathol. 1987;18(3):211–25. doi: 10.1016/s0046-8177(87)80002-3.
  2. Mrozek K, Heinonen K, de la Chapelle A, Bloomfield CD. Clinical significance of cytogenetics in acute myeloid leukemia. Semin Oncol. 1997;24(1):17–31.
  3. Rowe D, Cotterill SJ, Ross FM, et al. Cytogenetically cryptic AML1-ETO and CBFbeta-MYH11 gene rearrangement: incidence in 412 cases of acute myeloid leukaemia. Br J Haematol. 2000;111(4):1051–6. doi: 10.1111/j.1365-2141.2000.02474.x.
  4. Downing JR. AML1/CBFbeta transcription complex: its role in normal hematopoiesis and leukemia. Leukemia. 2001;15(4):664–5. doi: 10.1038/sj.leu.2402035.
  5. Рулина А.В., Спирин П.В., Прасолов В.С. Активированные лейкозные онкогены AML1-ETO и C-KIT: роль в развитии острого миелоидного лейкоза и современные подходы к их ингибированию. Успехи биологической химии. 2010;50:349–86.
    [Rulina AV, Spirin PV, Prasolov VS. Activated leukemic AML1-ETO и C-KIT oncogenes: their role in the development of acute myeloid leukemia and modern approaches to their inhibition. Uspekhi biologicheskoi khimii. 2010;50:349–86. (In Russ)]
  6. Grimwade D, Walker H, Oliver F, et al. A on behalf of the Medical Research Council Adult and Children’s Leukaemia Working Parties. The importance of diagnostic cytogenetics on outcome in AML: analysis of 1612 patients entered into the MRC AML 10 trial. Blood. 1998;92(7):2322–33.
  7. Lowenberg B. Postremission treatment of acute myelogenous leukemia. N Eng J Med. 1995;332(4):260–2. doi: 10.1056/nejm199501263320411.
  8. Byrd JC, Dodge RK, Carroll A, et al. Patients with t(8;21) (q22;q22) and acute myeloid leukemia have superior failure-free and overall survival when repetitive cycles of high-dose cytarabine are administered. J Clin Oncol. 1999;17(12):3767–75.
  9. Byrd JC, Mrozek K, Dodge RK, et al. Pretreatment cytogenetic abnormalities are predictive of induction success, cumulative incidence of relapse and overall survival in adult patients with de novo acute myeloid leukemia: results from Cancer and Leukemia Group B (CALGB 8461). Blood. 2002;100(13):4325–36. doi: 10.1182/blood-2002-03-0772.
  10. Byrd JC, Ruppert AS, Mrozek K, et al. Repetitive cycles of high-dose cytarabine benefit patients with acute myeloid leukemia and inv(16) (p13q22) or t(16;16): results from CALGB 8461. J Clin Oncol. 2004;22(6):1087–94. doi: 10.1200/jco.2004.07.012.
  11. Schlenk RF, Benner A, Krauter J, et al. Individual patient data-based meta-analysis of patients aged 16 to 60 years with core binding factor acute myeloid leukemia: a survey of the German Acute Myeloid Leukemia Intergroup. J Clin Oncol. 2004;22(18):3741–50. doi: 10.1200/jco.2004.03.012.
  12. Marcucci G, Mrozek K, Ruppert AS, et al. Prognostic factors and outcome of core binding factor acute myeloid leukemia patients with t(8;21) differ from those of patients with inv(16): a Cancer and Leukemia Group B Study. J Clin Oncol. 2005;23(24):5705–17. doi: 10.1200/jco.2005.15.610.
  13. Yin JAL, O’Brien MA, Hills RK, et al. Minimal residual disease monitoring by quantitative RT-PCR in core binding factor AML allows risk stratification and predicts relapse: Results of the United Kingdom MRC AML-15 Trial. Blood. 2012;120(14):2826–35. doi: 10.1182/blood-2012-06-435669.
  14. Jourdan E, Boissel N, Chevret S, et al. Prospective evaluation of gene mutations and minimal residual disease in patients with core binding factor acute myeloid leukemia. Blood. 2013;121(12):2213–23. doi: 10.1182/blood-2012-10-462879.
  15. Byrd JC, Weiss RB, Arthur DC, et al. Extramedullary leukemia adversely affects hematologic complete remission rate and overall survival in patients with t(8;21)(q22;q22): results from Cancer and Leukemia Group B 8461. J Clin Oncol. 1997;15(2):466–75.
  16. Nguyen S, Leblanc T, Fenaux P, et al. A white blood cell index as the main prognostic factor in t(8;21) acute myeloid leukemia (AML): a survey of 161 cases from the French AML Intergroup. Blood. 2002;99(10):3517–23. doi: 10.1182/blood.V99.10.3517.
  17. Baer MR, Stewart CC, Lawrence D, et al. Expression of the neural cell adhesion molecule CD56 is associated with short remission duration and survival in acute myeloid leukemia with t(8;21)(q22;q22). Blood. 1997;90(4):1643–8.
  18. Schoch C, Haase D, Haferlach T, et al. Fifty-one patients with acute myeloid leukemia and translocation t(8;21)(q22;q22): an additional deletion in 9q is an adverse prognostic factor. Leukemia. 1996;10(8):1288–95.
  19. Paschka P, Marcucci G, Ruppert AS, et al. Adverse prognostic significance of KIT mutations in adult acute myeloid leukemia with inv(16) and t(8;21): a Cancer and Leukemia Group B Study. J Clin Oncol. 2006;24(24):3904–11. doi: 10.1200/jco.2006.06.9500.
  20. Boissel N, Leroy H, Brethon B, et al. Incidence and prognostic impact of c-Kit, FLT3, and Ras gene mutations in core binding factor acute myeloid leukemia (CBF-AML). Leukemia. 2006;20(6):965–70. doi: 10.1038/sj.leu.2404188.
  21. Hoyos M, Nomdedeu JF, Esteve J, et al. Core binding factor acute myeloid leukemia: the impact of age, leukocyte count, molecular findings, and minimal residual disease. Eur J Haematol. 2013;91(3):209–18. doi: 10.1111/ejh.12130.
  22. Демидова И.А. Использование молекулярно-биологических методов для определения генетических нарушений при миелоидных лейкозах и мониторирования минимальной остаточной болезни. Онкогематология. 2007;4:17–25.
    [Demidova IA. Application of molecular-biological methods for determining genetic disorders in myeloid leukemias and monitoring of minimal residual diseases. Onkogematologiya. 2007;4:17–25. (In Russ)]
  23. Estey EH. Acute myeloid leukemia: 2013 update on risk-stratification and management. Am J Hematol. 2013;88(4):318–27. doi: 10.1002/ajh.23404.
  24. Buccisano F, Maurillo L, Del Principe MI, et al. Prognostic and therapeutic implications of minimal residual disease detection in acute myeloid leukemia. Blood. 2012;119(2):332–41. doi: 10.1182/blood-2011-08-363291.
  25. Tobal K, Newton J, Nige S, et al. Molecular quantitation of minimal residual disease in acute myeloid leukemia with с t(8;21) can identify patients in durable remission and predict clinical relapse. Blood. 2000;95(3):815–9.
  26. Yin JAL, O’Brien MA, Hills RK, et al. Minimal residual disease monitoring by quantitative RT-PCR in core binding factor AML allows risk stratification and predicts relapse: Results of the United Kingdom MRC AML-15 Trial. Blood. 2012;120(14):2826–30. doi: 10.1182/blood-2012-06-435669.
  27. Jourdan E, Boissel N, Chevret S, et al. Prospective evaluation of gene mutations and minimal residual disease in patients with core binding factor acute myeloid leukemia. Blood. 2013;121(12):2213–23. doi: 10.1182/blood-2012-10-462879.
  28. Zhu H-H, Zhang X-H, Qin Y-Z, et al. MRD-directed risk stratification treatment may improve outcomes of t(8;21) AML in the first complete remission: results from the AML05 multicenter trial. Blood. 2013;121(2):4056–62. doi: 10.1182/blood-2012-11-468348.
  29. Morschhauser F, Cayuela JM, Martini S, et al. Evaluation of minimal residual disease using reverse-transcription polymerase chain reaction in t(8;21) acute myeloid leukemia: a multicenter study of 51 patients. J Clin Oncol. 2000;18(4):778–94.
  30. Willekens C, Blanchet O, Renneville A, et al. Prospective long-term minimal residual disease monitoring using RQ-PCR in RUNX1-RUNX1T1-positive acute myeloid leukemia: results of the French CBF-2006 trial. Haematologica. 2016;101(3):328–35. doi: 10.3324/haematol.2015.131946.
  31. Schnittger S, Weisser M, Schoch C, et al. New score predicting for prognosis in PML-RARA+, AML1-ETO+, or CBFBMYH11+ acute myeloid leukemia based on quantification of fusion transcripts. Blood. 2003;102(8):2746–55. doi: 10.1182/blood-2003-03-0880.
  32. Ommen HB, Schnittger S, Jovanovic JV, et al. Strikingly different molecular relapse kinetics in NPM1c, PML-RARA, RUNX1-RUNX1T1, and CBFB-MYH11 acute myeloid leukemias. Blood. 2010;115(2):198–205. doi: 10.1182/blood-2009-04-212530.
  33. Krauter J, Gorlich K, Ottmann O, et al. Prognostic value of minimal residual disease quantification by real-time reverse transcriptase polymerase chain reaction in patients with core binding factor leukemias. J Clin Oncol. 2003;21(23):4413–22. doi: 10.1200/jco.2003.03.166.
  34. Marcucci G, Livak KJ, Bi W, et al. Detection of minimal residual disease in patients with AML1/ETO-associated acute myeloid leukemia using a novel quantitative reverse ttranscriptase polymerase chain reaction assay. Leukemia. 1998;12(9):1482–9. doi: 10.1038/sj.leu.2401128.
  35. Lane S, Saal R, Molle P, et al. A ³ 1 log rise in RQ-PCR transcript levels defines molecular relapse in core binding factor acute myeloid leukemia and predicts subsequent morphologic relapse. Leuk Lymphoma. 2008;49(3):517–23. doi: 10.1080/10428190701817266.
  36. Perrea G, Lasa A, Aventi A, et al. Prognostic value of minimal residual disease in acute myeloid leukemia with favorable cytogenetics [t(8.21) and inv(16)]. Leukemia. 2006;20(1):87–94. doi: 10.1038/sj.leu.2404015.
  37. Jaso JM, Wang SA, Jorgensen JL, et al. Multicolor flow cytometric immunophenotyping for detection of minimal residual disease in AML: Past, present and future. Bone Marrow Transplant. 2014;49(9):1129–38. doi: 10.1038/bmt.2014.99.
  38. Bruggermann M, Raff T, Flohr T, et al. Clinical significance of minimal residual disease quantification in adult patients with standard-risk acute lymphoblastic leukemia. Blood. 2006;107(3):1116–23. doi: 10.1182/blood-2005-07-2708.
  39. Borowitz MJ, Devidas M, Hunger SP, et al. Clinical significance of minimal residual disease in childhood acute lymphoblastic leukemia and its relationship in other prognostic factors: a Children’s Oncology Group Study. Blood. 2008;111(12):5477–85. doi: 10.1182/blood-2008-01-132837.
  40. Muller MC, Cross NC, Erben P, et al. Harmonisation of molecular monitoring of CML therapy in Europe. Leukemia. 2009;23(11):1957–63. doi: 10.1038/leu.2009.168.
  41. Jurlander J, Caligiuri MA, Ruutu T, et al. Persistence of the AMLI/ETO Fusion Transcript in Patients Treated With Allogeneic Bone Marrow Transplantation for t(8;21) Leukemia. Blood. 1996;88(6):2183–219.
  42. Kayser S, Schlenk RF, Grimwade D, et al. Minimal residual disease–directed therapy in acute myeloid leukemia. Blood. 2015;125(15):2331–5. doi: 10.1182/blood-2014-11-578815.
  43. Evans PA, Short MA, Jack AS, et al. Detection and quantitation of the transcripts associated with the inv(16) in presentation and follow-up samples from patients with AML. Leukemia. 1997;11(3):364–9. doi: 10.1038/sj.leu.2400578.
  44. Laczika K, Novak M, Hilgarth B, et al. Competitive CBFbeta/MYH11 reverse transcriptase polymerase chain reaction for quantitative assessment of minimal residual disease during post remission therapy in acute myeloid leukemia with inversion 16: a pilot study. J Clin Oncol. 1998;16(4):1519–25.
  45. Krauter J, Hoellge W, Wattjies MP, et al. Detection and quantitation of CBFB/MYH11 fusion transcript in patients with inv(16) positive acute myeloblastic leukemia by real-time RT-PCR. Genes Chromos Cancer. 2001;30(4):342–8. doi: 10.1002/gcc.1100.
  46. Marcucci G, Caligiuri MA, Dohner H, et al. Quantification of CBFbeta/MYH11 fusion trancript byreal-time RT-PCR in patients with inv(16) acute myeloid leukemia. Leukemia. 2001;15(7):1072–80. doi: 10.1038/sj.leu.2402159.
  47. Duployez N, Willekens C, Marceau-Renaut A, et al. Prognosis and monitoring of core-binding factor acute myeloid leukemia: current and emerging factors. Exp Rev Hematol. 2014;8(1):43–56. doi: 10.1586/17474086.2014.976551.
  48. Shima T, Miyamoto T, Kikushige Y, et al. The ordered acquisition of Class II and Class I mutations directs formation of human t(8;21) acute myelogenous leukemia stem cell. Exp Hematol. 2014;42(11):955–65. doi: 10.1016/j.exphem.2014.07.267.
  49. Buonamici S, Ottaviani E, Visani G, et al. Patterns of AML-ETO1 transcript expression in patients with acute myeloid leukemia and t(8;21) in complete hematologic remission. Haematologica. 2004;89(1):103–5.
  50. Song J, Mercer D, Hu X, et al. Common Leukemia- and Lymphoma-Associated Genetic Aberrations in Healthy Individuals. J Mol Diagn. 2011;13(2);213–9. doi: 10.1016/j.jmoldx.2010.10.009.
  51. Miyamoto T, Weissman IL, Akashi K. AML1/ETO-expressing nonleukemic stem cells in acute myelogenous leukemia with 8;21 chromosomal translocation. Proc Nat Acad Sci. 2000;97(13):7521–6. doi: 10.1073/pnas.97.13.7521.
  52. Yin JAL, Tobal K. Detection of minimal residual disease in acute myeloid leukemias: methodologies, clinical and biological significance. Br J Haematol. 1999;106(3):578–90. doi: 10.1046/j.1365-2141.1999.01522.x.
  53. Corces-Zimmerman MR, Hong W-J, Weissman IL, et al. Preleukemic mutations in human acute myeloid leukemia affect epigenetic regulators and persist in remission. Proc Nat Acad Sci. 2014;111(7):2548–53. doi: 10.1073/pnas.1324297111.
  54. Russler-Germain DA, Spencer DH, Young MA, et al. The R882H DNMT3A Mutation Associated with AML Dominantly Inhibits Wild-Type DNMT3A by Blocking Its Ability to Form Active Tetramers. Cancer Cell. 2014;25(4):442–54. doi: 10.1016/j.ccr.2014.02.010.
  55. Ommen HB, Schnittger S, Jovanovic JV, et al. Strikingly different molecular relapse kinetics in NPM1c, PML-RARA, RUNX1-RUNX1T1, and CBFB-MYH11 acute myeloid leukemias. Blood. 2010;115(2):198–205. doi: 10.1182/blood-2009-04-212530.
  56. Wang Y, Wu D-P, Liu Q-F, et al. In adults with t(8;21) AML, posttransplant RUNX1/RUNX1T1-based MRD monitoring, rather than c-KIT mutations, allows further risk stratification. Blood. 2014;124(12):1880–6. doi: 10.1182/blood-2014-03-563403.

Перестройки хромосомного района 11q23 при острых миелоидных лейкозах у детей

МИЕЛОИДНЫЕ ОПУХОЛИ , ,

Е.В. Флейшман1, О.И. Сокова1, А.В. Попа1, Г.А. Цаур2,3,4, Л.Н. Константинова1, О.М. Плеханова2, М.В. Стригалева2, Е.С. Нохрина2, В.С. Немировченко1, О.Р. Аракаев2,3

1 ФГБУ «Российский онкологический научный центр им. Н.Н. Блохина» Минздрава России, Каширское ш., д. 24, Москва, Российская Федерация, 115478

2 ГБУЗ СО «Областная детская клиническая больница № 1», ул. С. Дерябиной, д. 32, Екатеринбург, Российская Федерация, 620149

3 ГАУЗ СО «Институт медицинских клеточных технологий», ул. Карла Маркса, д. 22а, Екатеринбург, Российская Федерация, 620026

4 ФГАОУ ВПО «УрФУ им. первого Президента России Б.Н. Ельцина», ул. Мира, д. 19, Екатеринбург, Российская Федерация, 620002

Для переписки: Елена Вольфовна Флейшман, д-р мед. наук, Каширское ш., д. 24, Москва, Российская Федерация, 115478; тел.: +7(499)323-57-22; e-mail: flesok@yandex.ru

Для цитирования: Флейшман Е.В., Сокова О.И., Попа А.В. и др. Перестройки хромосомного района 11q23 при острых миелоидных лейкозах у детей. Клиническая онкогематология. 2016;9(4):446–55.

DOI: 10.21320/2500-2139-2016-9-4-446-455

РЕФЕРАТ

Цель. Изучить особенности кариотипа с участием района 11q23, возрастные различия в частоте обнаружения этих хромосомных маркеров при острых миелоидных лейкозах (ОМЛ) у детей, а также определить их прогностическое значение при использовании протоколов лечения, принятых в ведущих детских гематологических клиниках России.

Методы. Хромосомный анализ клеток костного мозга и периферической крови выполнен до начала лечения у 395 детей в возрасте от 0 до 16 лет с первичным ОМЛ. Лечение проводилось в детских гематологических клиниках г. Москвы и Московской области, а также в Областной детской клинической больнице № 1 г. Екатеринбурга. Для оценки прогностического значения различных аномалий хромосомного района 11q23 (ген MLL) было отобрано 300 прослеженных пациентов, лечившихся по сходным современным программам. Для определения частоты перестроек 11q23/MLL при ОМЛ у пациентов разного возраста были обследованы не только дети, но и взрослые пациенты (n = 212).

Результаты. При ОМЛ частота изменений хромосомного района 11q23 превышала 40 % у детей 0–2 лет и понижалась с возрастом, составляя у пациентов старше 40 лет всего 2 %. Отмечена выраженная гетерогенность изменений кариотипа с перестройками 11q23/MLL: обнаружены как многочисленные транслокации с различными участками других хромосом, так и делеции 11q23. Кроме того, наблюдались разнообразные числовые и структурные дополнительные аномалии кариотипа. Показатели 10-летней безрецидивной (30,4 ± 6,7 %) и общей (35,1 ± 7,0 %) выживаемости при ОМЛ с изменениями района 11q23 (n = 61) были значительно хуже, чем у пациентов группы промежуточного риска (n = 103) — 48,9 ± 5,8 и 43,8 ± 7,5 % соответственно (p = 0,035). Они близки к показателям группы высокого риска (n = 44) — 35,9 ± 8,1 и 38,3 ± 7,6 % соответственно. Не удалось подтвердить данные литературы о том, что t(9;11) является более благоприятной, а t(6;11) и t(10;11) менее благоприятными прогностическими маркерами, чем все другие транслокации района 11q23. Наши результаты не подтверждают и негативное влияние на прогноз хромосомных маркеров, дополнительных к транслокациям района 11q23.

Заключение. Детей с ОМЛ, у которых обнаружены аномалии хромосомного района 11q23, следует включать в группу высокого риска при лечении по протоколам, применяемым в ведущих гематологических центрах России.

Ключевые слова: острые миелоидные лейкозы у детей, перестройки хромосомного района 11q23/MLL, группы риска.

Получено: 12 мая 2016 г.

Принято в печать: 15 июня 2016 г.

Читать статью в PDFpdficon

ЛИТЕРАТУРА

  1. Mitelman F. Catalog of chromosome aberrations in cancer. 5th edition. Willey-Liss; 1995.
  2. Heim S, Mitelman F. Cancer Cytogenetics. 2nd edition. Wiley-Liss; 1995.
  3. Heim S, Mitelman F. Cancer Cytogenetics. Chromosomal and Molecular Genetic Aberrations of Tumor Cells. 3rd edition. Wiley-Blackwell; 2009.
  4. Swerdlow SH, Campo E, Harris NL, et al, eds. WHO Classification of Tumours of Haematopoietic and Lymphoid Tissues. 4th edition. Lyon: IARC Press; 2008.
  5. Marshalek R. MLL leukemia and future treatment strategies. Arch Pharm Chem Life Sci. 2015;348(4):1–8. doi: 10.1002/ardp.201400449.
  6. Balgobind BV, Zwaan CM, Pieters R, van den Heuvel-Eibrink MM. The heterogeneity of pediatric MLL-rearranged acute myeloid leukemia. Leukemia. 2011;25(8):1239–48. doi: 10.1038/leu.2011.90.
  7. Meyer C, Hoffmann J, Burmeister T, et al. The MLL recombinome of acute leukemias in 2013. Leukemia. 2013;27(11):2165–76. doi: 10.1038/leu.2013.135.
  8. Balgobind BV, Raimondi SC, Harbott J, et al. Novel prognostic subgroups in childhood 11q23/MLL – rearranged acute myeloid leukemia: results of an International retrospective study. Blood. 2009;114(12):2489–96. doi: 10.1182/blood-2009-04-
  9. Grimwade D, Walker H, Oliver F, et al. The importance of diagnostic cytogenetics on outcome of 1,612 patients entered into the MRC AML 10 trial. Blood. 1998;92(7):2322–33.
  10. Grimwade D, Hills RK, Moorman AV, et al. Refinement of cytogenetic classification in acute myeloid leukemia: determination of prognostic significance of rare recurring chromosomal abnormalities among 5876 younger adult patients treated in the United kingdom Medical Research Council trials. Blood. 2010;116(3):354–65. doi: 10.1182/blood-2009-11-
  11. Mrozek K, Heinonen K, Lawrence D, et al. Adult patients with de novo acute myeloid leukemia and t(9;11)(p22;q23) have a superior outcome to patients with other translocations involving band 11q23: a Cancer and Leukemia Group Study. Blood. 1997;90(11):4532–8.
  12. Rubnitz JE, Raimondi SC, Tong X, et al. Favorable impact of the t(9;11) in childhood acute myeloid leukemia. J Clin Oncol. 2002;20(9):2302–9. doi: 1200/jco.2002.08.400.
  13. von Neuhoff C, Reinhardt D, Sander A, et al. Prognostic impact of specific chromosomal aberrations in large group of pediatric patients with acute myeloid leukemia treated uniformly according to trial AML-BFM 98. J Clin Oncol. 2010;28(16):2682–8. doi: 1200/jco.2009.25.6321.
  14. Blum W, Mrozek K, Ruppert AS, et al. Adult de novo acute myeloid leukemia with t(6;11)(q27;q23). Cancer. 2004;101(6):1420–7. doi: 10.1002/cncr.20489.
  15. Karol SE, Coustan-Smith E, Cao X, et al. Prognostic factors in children with acute myeloid leukemia and excellent response to remission induction therapy. Br J Haematol. 2015;168(1):94–101. doi: 1111/bjh.13107.
  16. Coenen EA, Raimondi SC, Harbott J, et al. Prognostic significance of additional cytogenetic aberrations in 733 de novo pediatric 11q23/MLL-rearranged AML patients: results of an international study. Blood. 2011;117(26):7102–11. doi: 1182/blood-2010-12-328302.
  17. Schaffer L, McGovan-Jordan J, Schmid M. ISCN. An International System for Human Cytogenetic Nomenclature. Basel: S. Karger; 2013. pp. doi: 10.1002/ajmg.a.35995.
  18. Цаур Г.А., Наседкина Т.В., Попов А.М. и др. Время достижения молекулярной ремиссии как фактор прогноза у детей первого года жизни острым лимфобластным лейкозом. Онкогематология. 2010;2:46–54.
    [Tsaur GA, Nasedkina TV, Popov AM, et al. Time required to achieve molecular remission as a prognostic factor in children of the first year of life with acute lymphoblastic leukemia. Onkogematologiya. 2010;2:46–54. (In Russ)]
  19. Meyer C, Schneider B, Reichel M, et al. Diagnostic tool for the identification of MLL rearrangements including unknown partner genes. Proc Natl Acad Sci USA. 2005;102(2):449–54. doi: 10.1073/pnas.0406994102.
  20. Kaplan E, Meier P. Nonparametric estimation from incomplete observations. J Am Stat Assoc. 1958;53(282):457–81. doi: 1080/01621459.1958.10501452.
  21. Meyer С, Kowarz E, Hofmann J, et al. New insights to the MLL recombinome of acute leukemias. Leukemia. 2009;23(8):1490–9. doi: 10.1038/leu.2009.33.
  22. Ross M, Mahfouz R, Onciu M, et al. Gene expression profiling of pediatric acute myelogenous leukemia. Blood. 2004;104(12):3679–87. doi: 10.1182/blood-2004-03-1154.
  23. Shih L, Liang D, Fu J, et al. Characterization of fusion partner genes in 114 patients with de novo acute myeloid leukemia and MLL rearrangement. Leukemia. 2006;20:218–23. doi: 10.1038/sj.leu.2404024.
  24. Balgobind B, Hollink I, Reinhardt D, et al. Low frequency of MLL-partial tandem duplications in paediatric acute myeloid leukaemia using MLPA as a novel DNA screenings technique. Eur J Cancer. 2010;46(10):1892–9. doi: 10.1016/j.ejca.2010.02.019.
  25. Shimada A, Taki T, Tabuchi K, et al. Tandem duplications of MLL and FLT3 are correlated with poor prognoses in pediatric acute myeloid leukemia: a study of the Japanese childhood AML Cooperative Study Group. Pediatr Blood Cancer. 2008;50(2):264–9. doi: 10.1002/pbc.21318.
  26. Steudel C, Wermke M, Schaich M, et al. Comparative analysis of MLL partial tandem duplication and FLT3 internal tandem duplication mutations in 956 adult patients with acute myeloid leukemia. Gene Chromos Cancer. 2003;37(3):237–51. doi: 10.1002/gcc.10219.
  27. Rege-Cambrin G, Giugliano E, Michaux L, et al. Trisomy 11 in myeloid malignancies is associated with internal tandem duplication of both MLL and FLT3 genes. Haematologica. 2005;90(2):262–4.
  28. Swansbury GJ, Slater R, Bain BJ, et al. Hematological malignancies with t(9;11)(p21-22;q23) – laboratory and clinical study of 125 cases. European 11q23 Workshop participants. Leukemia. 1998;12(5):792–800. doi: 10.1038/sj.leu.2401014.
  29. Harrison CJ, Hills RK, Moorman AV, et al. Cytogenetics of childhood acute myeloid leukemia: United Kingdom Medical Research Council Treatment trials AML10 and 12. J Clin Oncol. 2010;28(16):2674–81. doi: 10.1200/jco.2009.24.8997.
  30. Pession A, Masetti R, Rizzari C, et al. Results of the ALEOP AML 2002/01 multicenter prospective trial for the treatment of children with acute myeloid leukemia. Blood. 2013;122(2):170–8. doi: 10.1182/blood-2013-03-491621.
  31. Schoch C, Schnittger S, Klaus M, et al. AML with 11q23/MLL abnormalities as defined by the WHO classification: incidence, partner chromosome, FAB subtype, age distribution, and prognostic impact in an unselected series of 1897 cytogenetically analyzed AML cases. Blood. 2003;102(7):2395–402. doi: 10.1182/blood-2003-02-0434.
  32. Tamai H, Yamaguchi H, Hamaguchi H, et al. Clinical features of adult acute leukemia with 11q23 abnormalities in Japan: A co-operative multicenter study. Int J Hematol. 2008;87(2):193–200. doi: 10.1007/s12185-008-0034-
  33. Balgobind BV, Zwaan CM, Reinhardt D, et al. High BRE expression in pediatric MLL-rearranged AML is associated with favorable outcome. Leukemia. 2010;24(12):2048–55. doi: 10.1038/leu.2010.211.
  34. Balgobind BV, Lugthart S, Hollink IH, et al. EVI1 overexpression in distinct subtypes of pediatric acute myeloid leukemia. Leukemia. 2010;24(5):942–9. doi: 10.1038/leu.2010.47.
  35. Ho PA, Alonzo TA, Gerbing RB, et al. High EVI1 expression is associated with MLL rearrangements and predicts decreased survival. Br J Haematol. 2013;62(5):670–7. doi: 1111/bjh.12444.
  36. Chen C, Armstrong S. Targeting DOT1L and HOX gene expression in MLL-rearranged leukemia and beyond. Exp Hematol. 2015;43(8):673–84. doi: 10.1016/j.exphem.2015.05.012.
  37. Nguyen AT, Taranova O, He J, Zhang Y. DOT1L, the H3K79 methyltransferase, is required for MLL-AF9-mediated leukemogenesis. Blood. 2011;117(25):6912–22. doi: 10.1182/blood-2011-02-
  38. Stein EM, Garcia-Manero G, Rizzieri DA, et al. The DOT1L Inhibitor EPZ-5676: safety and activity in relapsed/refractory patients with MLL-rearranged leukemia. [Internet] Available from: http://www.epizyme.com/wp-content/uploads/2014/12/ASH-EPZ-5676-Presentation-Final.pdf. (accessed 10.05.2016).

Биология миелопролиферативных новообразований

МИЕЛОИДНЫЕ ОПУХОЛИ , , , , , , ,

А.Л. Меликян, И.Н. Суборцева

ФГБУ «Гематологический научный центр» Минздрава России, Новый Зыковский пр-д, д. 4а, Москва, Российская Федерация, 125167

Для переписки: Ирина Николаевна Суборцева, канд. мед. наук, Новый Зыковский пр-д, д. 4а, Москва, Российская Федерация, 125167; тел.: +7(495)612-44-71; e-mail: soubortseva@yandex.ru

Для цитирования: Меликян А.Л., Суборцева И.Н. Биология миелопролиферативных новообразований. Клиническая онкогематология. 2016;9(3):314-25.

DOI: 10.21320/2500-2139-2016-9-3-314-325

РЕФЕРАТ

Хронические миелопролиферативные заболевания (ВОЗ, 2001), или миелопролиферативные новообразования/опухоли (МПН) (ВОЗ, 2008), являются клональными заболеваниями, характеризуются пролиферацией одной или более клеточной линии миелопоэза в костном мозге с признаками сохраняющейся терминальной дифференцировки и, как правило, сопровождаются изменениями показателей крови. В группу классических Ph-негативных МПН отнесены истинная полицитемия, эссенциальная тромбоцитемия, первичный миелофиброз и МПН неклассифицируемое. Приобретенные соматические мутации, лежащие в основе патогенеза Ph-негативных МПН, представлены мутациями генов JAK2 (V617F, экзон 12), MPL, CALR. Мутации перечисленных генов наблюдаются примерно у 90 % больных. Однако данные молекулярные события не являются уникальными в патогенезе заболеваний. Мутации других генов (ТЕТ2, ASXL1, CBL, IDH1/IDH2, IKZF1, DNMT3A, SOCS, EZH2, TP53, RUNX1 и HMGA2) принимают участие в формировании фенотипа заболевания. В настоящем обзоре описываются современные представления о молекулярной биологии МПН.

Ключевые слова: хронические миелопролиферативные заболевания, миелопролиферативные новообразования, истинная полицитемия, эссенциальная тромбоцитемия, первичный миелофиброз, ген JAK2, ген CALR, ген MPL.

Получено: 11 апреля 2016 г.

Принято в печать: 11 апреля 2016 г.

Читать статью в PDFpdficon

ЛИТЕРАТУРА

  1. Barbui T, Barosi G, Birgegard G, et al. Philadelphia-negative classical myeloproliferative neoplasms: critical concepts and management recommendations from European LeukemiaNet. J Clin Oncol. 2011;29(6):761–70. doi: 10.1200/jco.2010.31.8436.
  2. Tefferi A, Thiele J, Vardiman JW. The 2008 World Health Organization classification system for myeloproliferative neoplasms: order out of chaos. Cancer. 2009;115(17):3842–7. doi: 10.1002/cncr.24440.
  3. Barosi G. Essential thrombocythemia vs. early/prefibrotic myelofibrosis: why does it matter. Best Pract Res Clin Haematol. 2014;27(2):129–40. doi: 10.1016/j.beha.2014.07.004.
  4. Vannucchi AM. Management of myelofibrosis. Am Soc Hematol Educ Program. 2011;2011(1):222–30. doi:10.1182/asheducation-2011.1.222.
  5. Cervantes F, Dupriez B, Pereira A, et al. New prognostic scoring system for primary myelofibrosis based on a study of the International Working Group for Myelofibrosis Research and Treatment. Blood. 2009;113(13):2895–901. doi: 10.1182/blood-2008-07-170449.
  6. Gangat N, Caramazza D, Vaidya R, et al. DIPSS plus: a refined Dynamic International Prognostic Scoring System for primary myelofibrosis that incorporates prognostic information from karyotype, platelet count, and transfusion status. J Clin Oncol. 2011;29(4):392–7. doi: 10.1200/jco.2010.32.2446.
  7. Passamonti F, Cervantes F, Vannucchi AM, et al. A dynamic prognostic model to predict survival in primary myelofibrosis: a study by the IWG-MRT (International Working Group for Myeloproliferative Neoplasms Research and Treatment). Blood. 2010;115(9):1703–8. doi: 10.1182/blood-2009-09-245837.
  8. Tefferi A. How I treat myelofibrosis. Blood. 2011;117(13):3494–504. doi: 10.1182/blood-2010-11-315614.
  9. Tefferi A, Guglielmelli P, Lasho TL, et al. CALR and ASXL1 mutations-based molecular prognostication in primary myelofibrosis: an international study of 570 patients. Leukemia. 2014;28(7):1494–500. doi: 10.1038/leu.2014.57.
  10. Agarwal MB, Malhotra H, Chakrabarti P, et al. Myeloproliferative neoplasms working group consensus recommendations for diagnosis and management of primary myelofibrosis, polycythemia vera, and essential thrombocythemia. Indian J Med Paediatr Oncol. 2015;36(1):3–16. doi: 10.4103/0971-5851.151770.
  11. Campregher PV, Santos FP, Perini GF, Hamerschlak N. Molecular biology of Philadelphia-negative myeloproliferative neoplasms. Rev Bras Hematol Hemoter. 2012;34(2):150–5. doi: 10.5581/1516-8484.20120035.
  12. Ghoreschi K, Laurence A, O’Shea JJ. Janus kinases in immune cell signaling. Immunol Rev. 2009;228(1):273–87. doi: 10.1111/j.1600-065X.2008.00754.x.
  13. Liu KD, Gaffen SL, Goldsmith MA. JAK/STAT signaling by cytokine receptors. Curr Opin Immunol. 1998;10(3):271–8. doi: 10.1016/s0952-7915(98)80165-9.
  14. Tefferi A. Novel mutations and their functional and clinical relevance in myeloproliferative neoplasms: JAK2, MPL, TET2, ASXL1, CBL, IDH and IKZF1. Leukemia. 2010;24(6):1128–38. doi: 10.1038/leu.2010.69.
  15. Riedy MC, Dutra AS, Blake TB, et al. Genomic sequence, organization, and chromosomal localization of human JAK3. Genomics. 1996;37(1):57–61. doi: 10.1006/geno.1996.0520.
  16. Saharinen P, Silvennoinen O. The pseudokinase domain is required for suppression of basal activity of Jak2 and Jak3 tyrosine kinases and for cytokine-inducible activation of signal transduction. J Biol Chem. 2002;277(49):47954–63. doi: 10.1074/jbc.M205156200.
  17. Benekli M, Baer MR, Baumann H, Wetzler M. Signal transducer and activator of transcription proteins in leukemias. Blood. 2003;101(8):2940–54. doi: 10.1182/blood-2002-04-1204.
  18. Vainchenker W, Delhommeau F, Constantinescu SN, Bernard OA. New mutations and pathogenesis of myeloproliferative neoplasms. Blood. 2011;118(7):1723–35. doi: 10.1182/blood-2011-02-292102.
  19. Lacout C, Pisani DF, Tulliez M, et al. JAK2V617F expression in murine hematopoietic cells leads to MPD mimicking human PV with secondary myelofibrosis. Blood. 2006;108(5):1652–660. doi: 10.1182/blood-2006-02-002030.
  20. James C, Ugo V, Le Couedic JP, et al. A unique clonal JAK2 mutation leading to constitutive signalling causes polycythaemia vera. Nature. 2005;434(7037):1144–8. doi: 10.1038/nature03546.
  21. Kralovics R, Passamonti F, Buser AS, et al. A gain-of-function mutation of JAK2 in myeloproliferative disorders. N Engl J Med. 2005;352(17):1779–90. doi: 10.1056/NEJMoa051113.
  22. Levine RL, Wadleigh M, Cools J, et al. Activating mutation in the tyrosine kinase JAK2 in polycythemia vera, essential thrombocythemia, and myeloid metaplasia with myelofibrosis. Cancer Cell. 2005;7(4):387–97. doi: 10.1016/j.ccr.2005.03.023.
  23. Baxter EJ, Scott LM, Campbell PJ, et al. Acquired mutation of the tyrosine kinase JAK2 in human myeloproliferative disorders. The Lancet. 2005;365(9464):1054–61. doi: 10.1016/S0140-6736(05)71142-9.
  24. Butcher CM, Hahn U, To LB, et al. Two novel JAK2 exon 12 mutations in JAK2V617F-negative polycythaemia vera patients. Leukemia. 2008;22(4):870–3. doi: 10.1038/sj.leu.2404971.
  25. Jelinek J, Oki Y, Gharibyan V, et al. JAK2 mutation 1849G>T is rare in acute leukemias but can be found in CMML, Philadelphia chromosome-negative CML, and megakaryocyticleukemia. Blood. 2005;106(10):3370–3. doi: 10.1182/blood-2005-05-1800.
  26. Pich A, Riera L, Sismondi F, et al. JAK2V617F activating mutation is associated with the myeloproliferative type of chronic myelomonocytic leukaemia. J Clin Pathol. 2009;62(9):798–801. doi: 10.1136/jcp.2009.065904.
  27. Johan MF, Goodeve AC, Bowen DT, et al. JAK2 V617F Mutation is uncommon in chronic myelomonocytic leukaemia. Br J Haematol. 2005;130(6):968. doi: 10.1111/j.1365-2141.2005.05719.x.
  28. Renneville A, Quesnel B, Charpentier A, et al. High occurrence of JAK2 V617 mutation in refractory anemia with ringed sideroblasts associated with marked thrombocytosis. Leukemia. 2006;20(11):2067–70. doi: 10.1038/sj.leu.2404405.
  29. Verstovsek S, Silver RT, Cross NC, Tefferi A. JAK2V617F mutational frequency in polycythemia vera: 100%, > 90%, less? Leukemia. 2006;20(11):2067. doi:10.1038/sj.leu.2404379.
  30. Vannucchi AM, Antonioli E, Guglielmelli P, et al. Clinical profile of homozygous JAK2 617V>F mutation in patients with polycythemia vera or essential thrombocythemia. Blood. 2007;110(3):840–6. doi: 10.1182/blood-2006-12-064287.
  31. Barosi G, Bergamaschi G, Marchetti M, et al. JAK2 V617F mutational status predicts progression to large splenomegaly and leukemic transformation in primary myelofibrosis. Blood. 2007;110(12):4030–6. doi: 10.1182/blood-2007-07-099184.
  32. Vannucchi AM, Lasho TL, Guglielmelli P, et al. Mutations and prognosis in primary myelofibrosis. Leukemia. 2013;27(9):1861–9. doi: 10.1038/leu.2013.119.
  33. Lussana F, Caberlon S, Pagani C, et al. Association of V617F Jak2 mutation with the risk of thrombosis among patients with essential thrombocythaemia or idiopathic myelofibrosis: a systematic review. Thromb Res. 2009;124(4):409–17. doi: 10.1016/j.thromres.2009.02.004.
  34. Wang M, He N, Tian T, et al. Mutation analysis of JAK2V617F, FLT3-ITD, NPM1, and DNMT3A in Chinese patients with myeloproliferative neoplasms. BioMed Res Int. 2014;2014:485645. doi: 10.1155/2014/485645.
  35. Passamonti F, Thiele J, Girodon F, et al. A prognostic model to predict survival in 867 World Health Organization-defined essential thrombocythemia at diagnosis: a study by the International Working Group on Myelofibrosis Research and Treatment. Blood. 2012;120(6):1197–201. doi: 10.1182/blood-2012-01-403279.
  36. Barbui T, Carobbio A, Rambaldi A, Finazzi G. Perspectives on thrombosis in essential thrombocythemia and polycythemia vera: is leukocytosis a causative factor? Blood. 2009;114(4):759–63. doi: 10.1182/blood-2009-02-206797.
  37. Barbui T, Finazzi G, Carobbio A, et al. Development and validation of an International Prognostic Score of thrombosis in World Health Organization-essential thrombocythemia (IPSET-thrombosis). Blood. 2012;120(26):5128–33. doi: 10.1182/blood-2012-07-444067.
  38. Tefferi A, Pardanani A. Myeloproliferative neoplasms – a contemporary review. JAMA Oncol. 2015;1(1):97–105. doi: 10.1001/jamaoncol.2015.89.
  39. Nussenzveig RH, Swierczek SI, Jelinek J, et al. Polycythemia vera is not initiated by JAK2V617F mutation. Exp Hematol. 2007;35(1):32–8. doi: 10.1016/j.exphem.2006.11.012.
  40. Scott LM, Tong W, Levine RL, et al. JAK2 exon 12 mutations in polycythemia vera and idiopathic erythrocytosis. N Engl J Med. 2007;356(5):459–68. doi: 10.1056/NEJMoa065202.
  41. Williams DM, Kim AH, Rogers O, et al. Phenotypic variations and new mutations in JAK2 V617F-negative polycythemia vera, erythrocytosis, and idiopathic myelofibrosis. Exp Hematol. 2007;35(11):1641–6. doi: 10.1016/j.exphem.2007.08.010.
  42. Passamonti F, Elena C, Schnittger S, et al. Molecular and clinical features of the myeloproliferative neoplasm associated with JAK2 exon 12 mutations. Blood. 2011;117(10):2813–6. doi: 10.1182/blood-2010-11-316810.
  43. Campbell PJ, Griesshammer M, Dohner K, et al. V617F mutation in JAK2 is associated with poorer survival in idiopathic myelofibrosis. Blood. 2006;107(5):2098–100. doi: 10.1182/blood-2005-08-3395.
  44. Martinez-Aviles L, Besses C, Alvarez-Larran A, et al. JAK2 exon 12 mutations in polycythemia vera or idiopathic erythrocytosis. Haematologica. 2007;92(12):1717–8. doi: 10.3324/haematol.12011.
  45. Sangkhae V, Etheridge SL, Kaushansky K, Hitchcock IS. The thrombopoietin receptor, MPL, is critical for development of a JAK2V617F-induced myeloproliferative neoplasm. Blood. 2014;124(26):3956–63. doi: 10.1182/blood-2014-07-587238.
  46. Chou FS, Mulloy JC. The thrombopoietin/MPL pathway in hematopoiesis and leukemogenesis. J Cell Biochem. 2011;112(6):1491-8. doi: 10.1002/jcb.23089.
  47. Abe M, Suzuki K, Inagaki O, et al. A novel MPL point mutation resulting in thrombopoietin-independent activation. Leukemia. 2002;16(8):1500–6. doi: 10.1038/sj.leu.2402554.
  48. Ding J, Komatsu H, Wakita A, et al. Familial essential thrombocythemia associated with a dominant-positive activating mutation of the c-MPL gene, which encodes for the receptor for thrombopoietin. Blood. 2004;103(11):4198–200. doi: 10.1182/blood-2003-10-3471.
  49. Moliterno AR, Williams DM, Gutierrez-Alamillo LI, et al. Mpl Baltimore: A thrombopoietin receptor polymorphism associated with thrombocytosis. Proc Natl Acad Sci USA. 2004;101(31):11444–7. doi: 10.1073/pnas.0404241101.
  50. Pikman Y, Lee BH, Mercher T, et al. MPLW515L is a novel somatic activating mutation in myelofibrosis with myeloid metaplasia. PLoS Med. 2006;3(7):e270. doi: 10.1371/journal.pmed.0030270.
  51. Staerk J, Lacout C, Sato T, et al. An amphipathic motif at the transmembrane-cytoplasmic junction prevents autonomous activation of the thrombopoietin receptor. Blood. 2006;107(5):1864–71. doi: 10.1182/blood-2005-06-2600.
  52. Boyd EM, Bench AJ, Goday-Fernandez A, et al. Clinical utility of routine MPL exon 10 analysis in the diagnosis of essential thrombocythaemia and primary myelofibrosis. Br J Haematol. 2010;149(2):250–7. doi: 10.1111/j.1365-2141.2010.08083.x.
  53. Lambert MP, Jiang J, Batra V, et al. A novel mutation in MPL (Y252H) results in increased thrombopoietin sensitivity in essential thrombocythemia. Am J Hematol. 2012;87(5):532–4. doi: 10.1002/ajh.23138.
  54. Hussein K, Bock O, Theophile K, et al. MPLW515L mutation in acute megakaryoblastic leukaemia. Leukemia. 2009;23(5):852–5. doi: 10.1038/leu.2008.371.
  55. Beer PA, Campbell PJ, Scott LM, et al. MPL mutations in myeloproliferative disorders: analysis of the PT-1 cohort. Blood. 2008;112(1):141–9. doi: 10.1182/blood-2008-01-131664.
  56. Akpinar TS, Hancer VS, Nalcaci M, Diz-Kucukkaya R. MPL W515L/K Mutations in chronic myeloproliferative neoplasms. Turk J Haematol. 2013;30(1):8–12. doi: 10.4274/tjh.65807.
  57. Vannucchi AM, Antonioli E, Guglielmelli P, et al. Characteristics and clinical correlates of MPL 515W>L/K mutation in essential thrombocythemia. Blood. 2008;112(3):844–7. doi: 10.1182/blood-2008-01-135897.
  58. Teofili L, Giona F, Torti L, et al. Hereditary thrombocytosis caused by MPLSer505Asn is associated with a high thrombotic risk, splenomegaly and progression to bone marrow fibrosis. Haematologica. 2010;95(1):65–70. doi: 10.3324/haematol.2009.007542.
  59. Sun C, Zhang S, Li J. Calreticulin gene mutations in myeloproliferative neoplasms without Janus kinase 2 mutations. Leuk Lymphoma. 2015;56(6):1593–8. doi: 10.3109/10428194.2014.953153.
  60. Klampfl T, Gisslinger H, Harutyunyan AS, et al. Somatic mutations of calreticulin in myeloproliferative neoplasms. N Engl J Med. 2013;369(25):2379–90. doi: 10.1056/NEJMoa1311347.
  61. Nangalia J, Massie CE, Baxter EJ, et al. Somatic CALR mutations in myeloproliferative neoplasms with nonmutated JAK2. N Engl J Med. 2013;369(25):2391–405. doi: 10.1056/NEJMoa1312542.
  62. Shirane S, Araki M, Morishita S, et al. JAK2, CALR, and MPL mutation spectrum in Japanese myeloproliferative neoplasms patients. Haematologica. 2015;100(2):46–8. doi: 10.3324/haematol.2014.115113.
  63. Lundberg P, Karow A, Nienhold R, et al. Clonal evolution and clinical correlates of somatic mutations in myeloproliferative neoplasms. Blood. 2014;123(14):2220–8. doi: 10.1182/blood-2013-11-537167.
  64. Lavi N. Calreticulin mutations in myeloproliferative neoplasms. Rambam Maimonides Med J. 2014;5(4):e0035. doi: 10.5041/RMMJ.10169.
  65. Rumi E, Harutyunyan AS, Pietra D, et al. CALR exon 9 mutations are somatically acquired events in familial cases of essential thrombocythemia or primary myelofibrosis. Blood. 2014;123(15):2416–9. doi: 10.1182/blood-2014-01-550434.
  66. Haslam K, Langabeer SE. Incidence of CALR mutations in patients with splanchnic vein thrombosis. Br J Haematol. 2015;168(3):459–60. doi: 10.1111/bjh.13121.
  67. Turon F, Cervantes F, Colomer D, et al. Role of calreticulin mutations in the aetiological diagnosis of splanchnic vein thrombosis. J Hepatol. 2015;62(1):72–4. doi: 10.1016/j.jhep.2014.08.032.
  68. Tefferi A, Wassie EA, Lasho TL, et al. Calreticulin mutations and long-term survival in essential thrombocythemia. Leukemia. 2014;28(12):2300–3. doi: 10.1038/leu.2014.148.
  69. Tefferi A, Lasho TL, Finke CM, et al. CALR vs JAK2 vs MPL-mutated or triple-negative myelofibrosis: clinical, cytogenetic and molecular comparisons. Leukemia. 2014;28(7):1472–7. doi: 10.1038/leu.2014.3.
  70. Tefferi A, Lasho TL, Finke C, et al. Type 1 vs type 2 calreticulin mutations in primary myelofibrosis: differences in phenotype and prognostic impact. Leukemia. 2014;28(7):1568–70. doi: 10.1038/leu.2014.83.
  71. Shide K, Kameda T, Shimoda H, et al. TET2 is essential for survival and hematopoietic stem cell homeostasis. Leukemia. 2012;26(10):2216–23. doi: 10.1038/leu.2012.94.
  72. Ito S, D’Alessio AC, Taranova OV, et al. Role of Tet proteins in 5mC to 5hmC conversion, ES-cell self-renewal and inner cell mass specification. Nature. 2010;466(7310):1129–33. doi: 10.1038/nature09303.
  73. Paulsson K, Haferlach C, Fonatsch C, et al. The idic(X)(q13) in myeloid malignancies: breakpoint clustering in segmental duplications and association with TET2 mutations. Hum Mol Genet. 2010;19(8):1507–14. doi: 10.1093/hmg/ddq024.
  74. Tefferi A, Pardanani A, Lim KH, et al. TET2 mutations and their clinical correlates in polycythemia vera, essential thrombocythemia and myelofibrosis. Leukemia. 2009;23(5):905–11. doi: 10.1038/leu.2009.47.
  75. Martinez-Aviles L, Besses C, Alvarez-Larran A, et al. TET2, ASXL1, IDH1, IDH2, and c-CBL genes in JAK2- and MPL-negative myeloproliferative neoplasms. Ann Hematol. 2012;91(4):533–41. doi: 10.1007/s00277-011-1330-0.
  76. Patriarca A, Colaizzo D, Tiscia G, et al. TET2 mutations in Ph-negative myeloproliferative neoplasms: identification of three novel mutations and relationship with clinical and laboratory findings. BioMed Res Int. 2013;2013:929840. doi: 10.1155/2013/929840.
  77. Schaub FX, Looser R, Li S, et al. Clonal analysis of TET2 and JAK2 mutations suggests that TET2 can be a late event in the progression of myeloproliferative neoplasms. Blood. 2010;115(10):2003–7. doi: 10.1182/blood-2009-09-245381.
  78. Delhommeau F, Dupont S, Della Valle V, et al. Mutation in TET2 in myeloid cancers. N Engl J Med. 2009;360(22):2289–301. doi: 10.1056/NEJMoa0810069.
  79. Beer PA, Delhommeau F, LeCouedic JP, et al. Two routes to leukemic transformation after a JAK2 mutation-positive myeloproliferative neoplasm. Blood. 2010;115(14):2891–900. doi: 10.1182/blood-2009-08-236596.
  80. Ortmann CA, Kent DG, Nangalia J, et al. Effect of mutation order on myeloproliferative neoplasms. N Engl J Med. 2015;372(7):601–12. doi: 10.1056/NEJMoa1412098.
  81. Gelsi-Boyer V, Trouplin V, Adelaide J, et al. Mutations of polycomb-associated gene ASXL1 in myelodysplastic syndromes and chronic myelomonocytic leukaemia. Br J Haematol. 2009;145(6):788–800. doi: 10.1111/j.1365-2141.2009.07697.x.
  82. Carbuccia N, Murati A, Trouplin V, et al. Mutations of ASXL1 gene in myeloproliferative neoplasms. Leukemia. 2009;23(11):2183–6. doi: 10.1038/leu.2009.141.
  83. Carbuccia N, Trouplin V, Gelsi-Boyer V, et al. Mutual exclusion of ASXL1 and NPM1 mutations in a series of acute myeloid leukemias. Leukemia. 2010;24(2):469–73. doi: 10.1038/leu.2009.218.
  84. Abdel-Wahab O, Adli M, LaFave LM, et al. ASXL1 mutations promote myeloid transformation through loss of PRC2-mediated gene repression. Cancer Cell. 2012;22(2):180–93. doi: 10.1016/j.ccr.2012.06.032.
  85. Brecqueville M, Rey J, Bertucci F, et al. Mutation analysis of ASXL1, CBL, DNMT3A, IDH1, IDH2, JAK2, MPL, NF1, SF3B1, SUZ12, and TET2 in myeloproliferative neoplasms. Genes Chromos Cancer. 2012;51(8):743–55. doi: 10.1002/gcc.21960.
  86. Katoh M. Functional and cancer genomics of ASXL family members. Br J Cancer. 2013;109(2):299–306. doi: 10.1038/bjc.2013.281.
  87. Cervantes F. How I treat myelofibrosis. Blood. 2014;124(17):2635–42. doi: 10.1182/blood-2014-07-575373.
  88. Ernst T, Chase AJ, Score J, et al. Inactivating mutations of the histone methyltransferase gene EZH2 in myeloid disorders. Nat Genet. 2010;42(8):722–6. doi: 10.1038/ng.621.
  89. Simon JA, Lange CA. Roles of the EZH2 histone methyltransferase in cancer epigenetics. Mutat Res. 2008;647(1–2):21–9. doi: 10.1016/j.mrfmmm.2008.07.010.
  90. Im AP, Sehgal AR, Carroll MP, et al. DNMT3A and IDH mutations in acute myeloid leukemia and other myeloid malignancies: associations with prognosis and potential treatment strategies. Leukemia. 2014;28(9):1774–83. doi: 10.1038/leu.2014.124.
  91. Walter MJ, Ding L, Shen D, et al. Recurrent DNMT3A mutations in patients with myelodysplastic syndromes. Leukemia. 2011;25(7):1153–8. doi: 10.1038/leu.2011.44.
  92. Yamashita Y, Yuan J, Suetake I, et al. Array-based genomic resequencing of human leukemia. Oncogene. 2010;29(25):3723–31. doi: 10.1038/onc.2010.117.
  93. Abdel-Wahab O, Pardanani A, Rampal R, et al. DNMT3A mutational analysis in primary myelofibrosis, chronic myelomonocytic leukemia and advanced phases of myeloproliferative neoplasms. Leukemia. 2011;25(7):1219–20. doi: 10.1038/leu.2011.82.
  94. Brecqueville M, Cervera N, Gelsi-Boyer V, et al. Rare mutations in DNMT3A in myeloproliferative neoplasms and myelodysplastic syndromes. Blood Cancer J. 2011;1(5):e18. doi: 10.1038/bcj.2011.15.
  95. Rudd CE. Lnk adaptor: novel negative regulator of B cell lymphopoiesis. Sci STKE. 2001;2001(85):pe1. doi: 10.1126/stke.2001.85.pe1.
  96. Gery S, Cao Q, Gueller S, et al. Lnk inhibits myeloproliferative disorder-associated JAK2 mutant, JAK2V617F. J Leuk Biol. 2009;85(6):957–65. doi: 10.1189/jlb.0908575.
  97. Soriano G, Heaney M. Polycythemia vera and essential thrombocythemia: new developments in biology with therapeutic implications. Curr Opin Hematol. 2013;20(2):169–75. doi: 10.1097/MOH.0b013e32835d82fe.
  98. Oh ST, Simonds EF, Jones C, et al. Novel mutations in the inhibitory adaptor protein LNK drive JAK-STAT signaling in patients with myeloproliferative neoplasms. Blood. 2010;116(6):988–92. doi: 10.1182/blood-2010-02-270108.
  99. Lasho TL, Pardanani A, Tefferi A. LNK mutations in JAK2 mutation-negative erythrocytosis. N Engl J Med. 2010;363(12):1189–90. doi: 10.1056/NEJMc1006966.
  100. Rathinam C, Thien CB, Flavell RA, Langdon WY. Myeloid leukemia development in c-Cbl RING finger mutant mice is dependent on FLT3 signaling. Cancer Cell. 2010;18(4):341–52. doi: 10.1016/j.ccr.2010.09.008.
  101. Loh ML, Sakai DS, Flotho C, et al. Mutations in CBL occur frequently in juvenile myelomonocytic leukemia. Blood. 2009;114(9):1859–63. doi: 10.1182/blood-2009-01-198416.
  102. Sanada M, Suzuki T, Shih LY, et al. Gain-of-function of mutated C-CBL tumour suppressor in myeloid neoplasms. Nature. 2009;460(7257):904–8. doi: 10.1038/nature08240.
  103. Zhang MY, Fung TK, Chen FY, Chim CS. Methylation profiling of SOCS1, SOCS2, SOCS3, CISH and SHP1 in Philadelphia-negative myeloproliferative neoplasm. J Cell Mol Med. 2013;17(10):1282–90. doi: 10.1111/jcmm.12103.
  104. Fourouclas N, Li J, Gilby DC, et al. Methylation of the suppressor of cytokine signaling 3 gene (SOCS3) in myeloproliferative disorders. Haematologica. 2008;93(11):1635–44. doi: 10.3324/haematol.13043.
  105. Kastner P, Chan S. Role of Ikaros in T-cell acute lymphoblastic leukemia. World J Biol Chem. 2011;2(6):108–14. doi: 10.4331/wjbc.v2.i6.108.
  106. Jager R, Kralovics R. Molecular pathogenesis of Philadelphia chromosome negative chronic myeloproliferative neoplasms. Curr Cancer Drug Targets. 2011;11(1):20–30. doi: 10.2174/156800911793743628.
  107. Ikeda K, Ogawa K, Takeishi Y. The role of HMGA2 in the proliferation and expansion of a hematopoietic cell in myeloproliferative neoplasms. Fukushima J Med Sci. 2012;58(2):91–100. doi: 10.5387/fms.58.91.
  108. Harada-Shirado K, Ikeda K, Ogawa K, et al. Dysregulation of the MIRLET7/HMGA2 axis with methylation of the CDKN2A promoter in myeloproliferative neoplasms. Br J Haematol. 2015;168(3):338–49. doi: 10.1111/bjh.13129.
  109. Raza S, Viswanatha D, Frederick L, et al. TP53 mutations and polymorphisms in primary myelofibrosis. Am J Hematol. 2012;87(2):204–6. doi: 10.1002/ajh.22216.
  110. Lu M, Hoffman R. p5 as a target in myeloproliferative neoplasms. Oncotarget. 2012;3(10):1052–3. doi: 10.18632/oncotarget.719.
  111. Gurney AL, Wong SC, Henzel WJ, de Sauvage FJ. Distinct regions of c-Mpl cytoplasmic domain are coupled to the JAK-STAT signal transduction pathway and Shc phosphorylation. Proc Natl Acad Sci USA. 1995;92(12):5292–6. doi: 10.1073/pnas.92.12.5292
  112. Tefferi A, Thiele J, Vannucchi AM, Barbui T. An overview on CALR and CSF3R mutations and a proposal for revision of WHO diagnostic criteria for myeloproliferative neoplasms. Leukemia. 2014;28(7):1407–13. doi: 10.1038/leu.2014.35.
  113. Broseus J, Park JH, Carillo S, et al. Presence of calreticulin mutations in JAK2-negative polycythemia vera. Blood. 2014;124(26):3964–6. doi: 10.1182/blood-2014-06-583161.
  114. Hasan S, Lacout C, Marty C, et al. JAK2V617F expression in mice amplifies early hematopoietic cells and gives them a competitive advantage that is hampered by IFNa. Blood. 2013;122(8):1464–77. doi: 10.1182/blood-2013-04-498956.
  115. Pardanani A, Lasho T, Finke C, et al. LNK mutation studies in blast-phase myeloproliferative neoplasms, and in chronic-phase disease with TET2, IDH, JAK2 or MPL mutations. Leukemia. 2010;24(10):1713–8. doi: 10.1038/leu.2010.163.