инфекции кровотока

Таксономическая структура и резистентность к антибиотикам возбудителей инфекций кровотока у онкогематологических больных

ИНФЕКЦИИ В ОНКОГЕМАТОЛОГИИ , , , , , ,

Багирова Н.С. 

ФГБНУ «Российский онкологический научный центр им. Н.Н. Блохина», Каширское ш., д. 24, Москва, Российская Федерация, 115478

Для переписки: Наталья Сергеевна Багирова, д-р мед. наук, Каширское ш., д. 24, Москва, Российская Федерация, 115478; тел.: +7(499)324-18-60; e-mail: nbagirova@mail.ru

Для цитирования: Багирова Н.С. Таксономическая структура и резистентность к антибиотикам возбудителей инфекций кровотока у онкогематологических больных. Клиническая онкогематология. 2015;8(2):191–200.

РЕФЕРАТ

Актуальность и цели. В онкогематологии инфекции являются одной из основных причин летальности у больных. Меняющиеся эпидемиологические закономерности отражают не только появление новых возбудителей инфекций кровотока, но и рост резистентности патогенов к противомикробным препаратам. Очень важно проводить постоянный мониторинг таксономической структуры возбудителей инфекций кровотока и их резистентности к антимикробным препаратам в целях адекватной и своевременной терапии тяжелых инфекций. Цель — анализ таксономической структуры возбудителей, выделенных при диагностике бактериемии у взрослых онкогематологических больных с использованием современных приборов, и эффективности терапии тяжелых инфекций.

Методы. Проведено микробиологическое исследование образцов крови онкогематологических больных при подозрении на сепсис и другие тяжелые инфекции за период с 2005 по 2013 г. Диагностику бактериемии проводили с использованием геманализаторов-инкубаторов Bactec FX400 (Becton Dickinson, США) и Bact/Alert (BioMerieux, Франция), идентификацию штаммов — с использованием масс-спектрометра MALDI-TOF Microflex LT (Biotyper, Bruker Daltonics, Германия). Чувствительность к антимикробным препаратам определяли на автоматическом анализаторе Microscan Walk Away 40/96+ (Siemens, Германия) и Vitek 2 (BioMerieux, Франция). Представлены сравнительные данные зарубежных исследователей.

Результаты. Было получено 3794 гемокультуры, из которых в 600 (15,8 %) случаях отмечен рост. Только 210 (53,6 %) из 392 штаммов были расценены как возбудители истинной бактериемии. Статистически значимых различий в частоте выделения грамположительных кокков (47,6 %) и грамотрицательных палочек (39,5 %) не выявлено. Грибы регистрировались статистически значимо реже грамположительных кокков и грамотрицательных палочек (9 %; p < 0,0001). Прочие микроорганизмы составили 3,8 %.

Заключение. Терапия и профилактика инфекционных осложнений у онкогематологических больных сопровождаются развитием нарастающей резистентности возбудителей к антибиотикам. Изменения в таксономической структуре возбудителей инфекций кровотока необходимо учитывать при назначении эмпирической и этиотропной терапии.

Ключевые слова: инфекции, рак, инфекции кровотока, бактериемия, антимикробная резистентность, онкогематологические заболевания, антимикробная терапия.

Получено: 12 января 2015 г.

Принято в печать: 30 января 2015 г.

Читать статью в PDFpdficon

ЛИТЕРАТУРА

  1. European Centre for Disease Prevention and Control (ECDC). Annual epidemiological report on communicable diseases in Europe 2008. Stockholm: ECDC; 2008.
  2. Pien BC, Sundaram P, Raoof N, et al. The clinical and prognostic importance of positive blood cultures in adults. Am J Med. 2010;123(9):819–28. doi: 10.1016/j.amjmed.2010.03.021.
  3. Dreyer AW. Blood Culture Systems: From Patient to Result. In: Azevedo L, ed. Sepsis – An Ongoing and Significant Challenge. InTech; 2012. pp. 287–310. doi: 10.5772/2958.
  4. Dellinger RP, Carlet JM, Masur H, et al. Surviving sepsis campaign guidelines for management of severe sepsis and septic shock. Crit Care Med. 2004;32(3):858–73. doi: 10.1097/01.ccm.0000117317.18092.e4.
  5. Kumar A, Roberts D, Wood KE, et al. Duration of hypotension before initiation of effective antimicrobial therapy is the critical determinant of survival in human septic shock. Crit Care Med. 2006;34(6):1589–96. doi: 10.1097/01.ccm.0000217961.75225.e9.
  6. Girmenia C, Menichetti F. Current Epidemiology and Prevention of Infectious Complications in Cancer Patients. Eur Oncol Haematol. 2011;7(4):270–7. doi: 10.17925/eoh.2011.07.04.270.
  7. Baron EJ, Miller JM, Weinstein MP, et al. A guide to utilization of the microbiology laboratory for diagnosis of infectious diseases: 2013 recommendations by the Infectious Diseases Society of America (IDSA) and the American Society for Microbiology (ASM)a. Clin Infect Dis. 2013;57(4): e22–e121. doi: 10.1093/cid/cit278.
  8. Багирова Н.С. Микробиологическая диагностика и рациональные подходы к терапии сепсиса у онкогематологических больных: Автореф. ¼ д-ра мед. наук. М., 2003. 274 с.
    [Bagirova NS. Mikrobiologicheskaya diagnostika i ratsional’nye podkhody k terapii sepsisa u onkogematologicheskikh bol’nykh. (Microbiological diagnosing and rational approaches to therapy of sepsis in oncohematological patients.) [dissertation] Moscow; 2003. 274 p. (In Russ)]
  9. Багирова Н.С., Дмитриева Н.В. Микробиологическая диагностика бактериемии. Пособие для врачей. М.: Министерство здравоохранения Российской Федерации, 2004. 35 с.
    [Bagirova NS, Dmitrieva NV. Mikrobiologicheskaya diagnostika bakteriemii. Posobie dlya vrachei. (Microbiological diagnosing of bacteriemia. Manual for physicians.) Moscow: Ministerstvo zdravookhraneniya Rossiiskoi Federatsii Publ.; 2004. 35 p. (In Russ)]
  10. Багирова Н.С. Современное состояние диагностики бактериемии. Сопроводительная терапия в онкологии. 2006;3:23–38.
    [Bagirova NS. State-of-the-art diagnostics of bacteriemia. Soprovoditel’naya terapiya v onkologii. 2006;3:23–38. (In Russ)]
  11. Laupland KB, Deirdre CL. Population-Based Epidemiology and Microbiology of сommunity-Onset Bloodstream Infections. Clin Microbiol Rev. 2014;27(4):647–64. doi: 10.1128/cmr.00002-14.
  12. Molnar Z, Fogas J. Timing IgM treatment in sepsis: is procalcitonin the answer? In: Vincent J-L, ed. Annual update in intensive care and emergency medicine 2012. Springer; 2012. pp. 109–15.
  13. Freifeld AG, Bow EJ, Sepkowitz KA, et al. Clinical Practice Guideline for the Use of Antimicrobial Agents in Neutropenic Patients with Cancer: 2010 Update by the Infectious Diseases Society of America (IDSA Guidelines). Clin Infect Dis. 2011;52(4):e56–e93. doi: 10.1093/cid/cir073.
  14. European Centre for Disease Prevention and Control (ECDC). Annual epidemiological report on communicable diseases in Europe 2009. Stockholm, European Centre for Disease Prevention and Control (Surveillance Report – 2.6 Antimicrobial resistance and healthcare-associated infections); 2010. рр. 167–78.
  15. Bagirova N, Dmitrieva N. Bacteriemia in patients with hematological malignancies. J Clin Microbiol Infect Dis. 2005;11(Suppl 2):678.
  16. Bal AM, Garau J, Gould IM, et al. Vancomycin in the treatment of meticillin-resistant Staphylococcus auseus (MRSA) infection: End or an era? J Glob Antimic Resist. 2013;1(1):23–30. doi: 10.1016/j.jgar.2013.01.002.
  17. Peel T, Cheng AC, Spelman T, et al. Differing risk factor for vancomycin-resistant and vancomycin-sensitive enterococcal bacteraemia. J Clin Microbiol Infect Dis. 2011;18(4):388–94. doi: 10.1111/j.1469-0691.2011.03591.x.
  18. Kim YJ, Kim SI, Hong KW, et al. Carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii: diversity of resistant mechanism and risk factor for infection. Epidemiol Infect. 2012;140(1):137–45. doi: 10.1017/s0950268811000744.
  19. Vila J, Pachon J. Acinetobacter baumannii resistant to everything: what should we do? J Clin Microbiol Infect Dis. 2011;17(7):955–6. doi: 10.1111/j.1469-0691.2011.03566.x.
  20. Villa-Fares X, Garcia de La Maria C, Lopez-Rojas R, et al. In vitro activity of several antimicrobial peptides against colistin-susceptible and colistin-resistant Acinetobacter baumannii. J Clin Microbiol Infect Dis. 2011;18(4):383–7. doi: 10.1111/j.1469-0691.2011.03581.x.
  21. Bagirova NS, Dmitrieva NV, Blokhin NN. Yeasts in patients (PTS) with hematologic malignancies (HM). Intern J Infect Dis. 2002;6(Suppl 2):S45. doi: 10.1016/s1201-9712(02)90273-0.
  22. Pfaller MA, Diekema DJ. Progress in antifungal susceptibility testing of Candida spp. by use of Clinical and Laboratory Standards Institute broth microdilution methods, 2010 to 2012. J Clin Microbiol. 2012;50(9):2846–56. doi: 10.1128/jcm.00937-12.
  23. Ranque S, Lachaud L, Gari-Toussaint M, et al. Interlaboratory reproducibility of Etest amphotericin B and caspofungin yeast susceptibility testing and comparison with the CLSI method. J Clin Microbiol. 2012;50(7):2305–9. doi: 10.1128/jcm.00490-12.
  24. Rangaraj G, Granwehr BP, Jiang Y, et al. Perils of quinolone exposure in cancer patients: breakthrough bacteremia with multidrug-resistant organisms. Cancer. 2010;116(4):967–73. doi: 10.1002/cncr.24812.